MICRODOSIS DE COENZIMA Q10
COMO POTENCIALIZADOR DE LA
CALIDAD ESPERMÁTICA DE SEMEN OVINO
CRIOCONSERVADO
MICRODOSES OF COENZYME Q10 AS A POTENTIAL
ENHANCER OF SPERM QUALITY IN CRYOPRESERVED
SHEEP SEMEN
Mónica Daniela Quinche Guazhambo
Universidad Católica de Cuenca, Ecuador
Andrés Leonardo Moscoso Piedra
Universidad Católica de Cuenca, Ecuador
Manuel Esteban Maldonado Cornejo
Universidad Católica de Cuenca, Ecuador
Juan Carlos Alvarado Alvarado
Universidad Católica de Cuenca, Ecuador
pág. 10059
DOI: https://doi.org/10.37811/cl_rcm.v9i1.16625
Microdosis de Coenzima Q10 como Potencializador de la Calidad
Espermática de Semen Ovino Crioconservado
Mónica Daniela Quinche Guazhambo1
monica.quinche.46@est.ucacue.edu.ec
https://orcid.org/0009-0005-4226-8501
Universidad Católica de Cuenca
Ecuador
Andrés Leonardo Moscoso Piedra
amoscosop@ucacue.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-4017-0165
Universidad Católica de Cuenca
Ecuador
Manuel Esteban Maldonado Cornejo
mmaldonadoc@ucacue.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-1507-2280
Universidad Católica de Cuenca
Ecuador
Juan Carlos Alvarado Alvarado
jalvaradoa@ucacue.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-7240-179X
Universidad Católica de Cuenca
Ecuador
RESUMEN
La Inseminación Artificial con semen congelado no es muy común en ovinos debido a la bajas tazas de
fertilidad, por lo que es necesario encontrar alternativas que pontecialicen la calidad espermática y así
permitan incrementar esta tasa, que se ve afectada principlamente durante el proceso de
crioconservación, debido a que los espermatozoides están expuestos a condiciones desfavorables,
haciéndolos susceptibles al choque térmico y al estrés oxidativo, provocando cambios estrucurales y
funcionales en los mismos. La Coenzima Q10 es un antioxidante que actúa a nivel celular y que es de
uso común como complemento fisilógico. El objetivo de estudiar el efecto de la Coenzima Q10 en el
semen ovino post congelación permite explorar nuevas alternativas que permitan corregir esta
problmática, para lo cual se lo evaluó en tres dosis: 1uM; 2uM y 5uM en 5 repeticiones, aplicadas
aplicadas durante el procedimiento de congelación, hallandose que estas no favorecen, ni desfavorecen
significtivamente (p>0,05) la calidad del semen, tanto en las pruebas de vitalidad, viabilidad,
permeabilidad y las tinciones, así como los parámetros cinéticos medidos mediante el sistema CASA,
por lo que se puede concluir que sus efectos podrian ser obsesrvables a mayores dosis, tal como sucede
con esta molecula en semen refrigerado.
Palabras clave: coenzima, sistema casa, choque térmico, estrés osmótico
1
Autor principal
Correspondencia: monica.quinche.46@est.ucacue.edu.ec
pág. 10060
Microdoses of Coenzyme Q10 as a Potential Enhancer of Sperm Quality in
Cryopreserved Sheep Semen
ABSTRACT
Artificial insemination with frozen semen is not very common in sheep due to low fertility rates, so it
is necessary to find alternatives that enhance sperm quality, thus increasing this rate, which is primarily
affected during the cryopreservation process. This is because sperm are exposed to unfavorable
conditions, making them susceptible to thermal shock and oxidative stress, leading to structural and
functional changes. Coenzyme Q10 is an antioxidant that works at the cellular level and is commonly
used as a physiological supplement. The objective of studying the effect of Coenzyme Q10 on post-
freeze sheep semen is to explore new alternatives to address this issue. For this, it was evaluated in three
doses: 1uM, 2uM, and 5uM in five repetitions, applied during the freezing procedure. It was found that
these doses neither significantly favor nor harm (p>0.05) sperm quality, as measured by vitality,
viability, permeability tests, staining, and kinematic parameters assessed through the CASA system.
Therefore, it can be concluded that its effects may be observable at higher doses, as seen with this
molecule in refrigerated semen.
Keywords: coenzima, casa sistem, thermal shock, osmotic stress
Artículo recibido 28 enero 2025
Aceptado para publicación: 20 febrero 2025
pág. 10061
INTRODUCCIÓN
La crianza y producción de ovinos es de gran importancia en el País por ser una actividad social y
económica para pequeños productores (Aibazov, 2022). A parte de su gran capacidad para adaptarse a
diversos climas y sistemas de manejo, proporciona múltiples productos como carne y lana. La
aplicación de biotecnologías en la reproducción asistida tiene como objetivo mejorar tanto la
productividad como la conservación genética. La inseminación artificial se utiliza para trasmitir las
características deseables del carnero de alto valor genético. Por otro lado, la congelación de semen
facilita la multiplicación y difusión de genes además que permite su conservación por un periodo
ilimitado, así como facilita el transporte evitando el costo de traslado y disminuyen el riesgo sanitario
(Yánez et al., 2022).
Sin embargo, la inseminación con semen congelado sigue siendo insatisfactoria en el ganado ovino
debido a la baja tasa de fertilidad (Ruiz et al., 2015). Esto se debe a los daños ocasionados en la
membrana del espermatozoide durante el proceso de crioconservación, ya que se altera la función
metabólica del mismo, por lo que reduce el número de células viables provocando una capacitación
espermática prematura (Sharafi et al., 2019). Estos daños pueden reducirse al controlar la velocidad de
congelación, utilizando un diluyendo adecuado y añadiendo los agentes crioprotectores.
El uso de antioxidantes como la coenzima Q10 que es una molécula liposoluble que actúa en la cadena
de transporte de electrones mitocondrial, contribuye a la protección celular y a la mejora de la viabilidad
espermática (Rodríguez, 2024). Se encuentra en todas las células del cuerpo y se sintetiza a partir de
tirosina, fenilalanina y acetil CoA y la mayor concentración se da en las membranas celulares,
especialmente en las mitocondrias. Esta molécula existe en dos formas; reducida (ubiquinol) u oxidada
(ubiquinona) y su estructura consiste en un anillo de benzoquinona y una cadena lateral isoprenoide
lipofílica la cual tiene un papel importante en la cadena de transporte de electrones utilizada para la
síntesis de ATP.
La aplicación de un diluyente es importante ya que preserva las características funcionales de los
espermatozoides, asegurando un nivel de fertilidad adecuado. Están compuestos por diferentes
sustancias como: crioprotectores, azucares, antibióticos y electrolitos que cumplen las funciones de:
proveer nutrientes como fuente de energía, mantener un adecuado equilibrio del pH, mantener una
pág. 10062
adecuada presión osmótica y balance electrolítico, proteger a los espermatozoides de la bajada de
temperatura e inhibir el crecimiento bacteriano, un diluyente específico para ovinos es el Ovixcell que
esta formulado por lecitina de soya, incluyendo las sustancias memcionadas anteriormente.
Existen varios parámetros para evaluar (Whitesell et al., 2020) , los cuales se clasifican en
macroscópicos (color, volumen, pH) y microscópicos (motilidad masal, motilidad individual,
concentración, integridad de la membrana, vitalidad.
La cantidad de espermatozoides en el eyaculado determina la coloración en la muestra: blanquecina-
amarillenta (buena calidad), leche acuosa (baja calidad), rojizo indica presencia de sangre, así como,
grises o marrones (contaminación o infección). El semen debe tener un aspecto cremoso-lechoso y
uniforme.
El volumen de un eyaculado, es esencial para asegurar una cantidad suficiente de espermatozoides, se
mide en mL y oscila entre 1.5 y 5 ml sin embargo puede variar según la edad, tamaño, método de
colecta, etc. Su pH esta esta relacionado con la concentración espermática
En cuanto a la movilidad espermática, esta se refiere a la capacidad de los espermatozoides para
moverse de manera adecuada (movimientos circulares y rectilíneos), se analiza mediante observación
macroscópico y microscópico los cuales son indicados en porcentajes mediante un método subjetivo
(90%), por otro lado, la vitalidad y mortalidad se analiza por medio de un microscopio utilizando una
prueba de tinción (eosina-nigrosina) donde los espermatozoides vivos no se tiñen y los muertos sí .
Para el análisis de la funcionalidad mitocondrial se utiliza Rodamina 123, este es un reactivo permeable
fluorescente, este compuesto atravieza la membrana, por lo que se introduce en las mitocondrias activas
y genera fluorescencia verde, siendo un indicador de las células con actividad mitocondrial, en cambio
el Youduro de propidio evalúa la viabilidad, este no puede atravesar la membrana celular intacta por lo
que solo penetra a la membrana dañada emitiendo con una fluorescensia roja.
Test hipoosmótico (host), se emplea para evaluar la integridad funcional de la membrana, determinando
la capacidad de la misma para mantener el equilibrio entre el esperma y su entorno, se trata de poner
los espermatozoides en un medio hipotónico, lo que provoca un desequilibrio osmótico entre el medio
extracelular e intracelular, los epsermatozoides vivos, provocan que la cola se enrrolle y los muertos
muestran la cola lisa (Kahwage et al., 2018).
pág. 10063
El sistema CASA (Computer Assisted Semen Analysis) permite un análisis confiable ademas de
cambios en las características de los espermatozoides, que no se pueden identificar mediante el análisis
convencional (Whitesell et al., 2020). Este sistema evalúa parámetros cinéticos como vitalidad,
concentración, velocidad promedio de los espermatozoides (osilación, rectitud y linealidad) asi como
la frecuencia de batida de flagelo y el movimiento lateral de la cabeza (Choi et al., 2022).
El propósito de este estudio fue evaluar el efecto de 1uM, 2uM y 5uM de coenzima Q10 sobre los
parámetros de calidad y cinéticos de semen post congelación de carneros de tres diferentes razas. Para
determinar la dosis óptima de CoQ10 sobre el semen ovino y por ende garantizar la viabilidad durante
el proceso de crioconservación, aplicando antioxidantes como la CoQ10 y empleando un diluyente
sintentico (Ovixell).
METODOLOGÍA
El presente estudio fue experimental comparitivo de corte transversal se propuso a traves de un Diseño
Completamente al Azar, la evaluación cuantitativa de diferentes dosis de CoQ10 frente a un Testigo.
Se realizó en el laboratorio de reproducción de la Unidad académica de Ciencia Agropecuarias de la
UCACUE que tuvo una duración de seis meses. Para la colecta de semen, se utilizaron 3 machos de
razas Katahdin, Pelibuey y Dorper, a los cuales se les estrajo 5 muestras a cada uno. Ana
Para este fin se empléo una vagina artificial (IMV Tecnologies), cargada con 40-60 ml de agua a una
temperatura de 45-50°C hasta proceder a la extracción. El semen se colecto en un tubo Falcón de 15
ml graduado.
El procedimiento de extracción implico sujetar a una oveja receptora (hembra) mientras un operador se
ubicaba a la derecha del carnero macho para colocar la vagina artificial en posición frente al prepucio
en un ángulo de 45°C, un movimiento hacia arriba y adelante denominado “golpe de rinón” indicó la
eyaculación, en seguida se protegió la muestra con la mano para evitar cambios bruscos de la
temperatura y se colocó en un baño termostático a 37°C.
Se realizó el análisis de volumen y concentración antes de su utilización, para evaluar volumen
utilizamos una micropipeta de 100-1000μl y para evaluar la concentración se tomó 30 μl de semen
fresco y se colocó en una microcubeta, la cual se llevó al fotómetro SDM 1 minitube específico para
ovinos.
pág. 10064
Con una micropipeta, se tomaron 5 μl de semen puro y se depositó en un portaobjeto y cubreobjeto
previamente temperados a 37°C. Posteriormente, se evaluó utilizando un microscopio optimo: como el
objetivo de 10x motilidad masal (M.M) y con el de 40x motilidad individual (M.I). En base a lo
observado, se le asigno un porcentaje utilizando una escala subjetiva de 0 a 100, siendo optima 90%.
Con el propósito de que el semen mantenga sus características se realizó una pre – dilución dentro de
la cabina de flujo: Ovixell y agua ultra pura (1:1). Para determinar la dosis de semen correcta, se preparo
una solución madre considerando: volumen x concentración x Motilidad Masal (90%). Se calculó para
la concentración deseada (50 millones), reflejando el resultado en μl el cual se dosifico para pajuelas de
0,25cc y se resto la predilución; posteriormente se colocó 800ul de solución en cuatro tubos Eppendorf
(1,5mm) previamente añadida la coenzima Q10 en dosis de 1uM, 2uM, 5uM y un testigo.
El material finalmente fue empajillado, 12 pajuelas (3 por cada tratamiento) con un total de 180 pajuelas
para el estudio completo. Para esto se utilizó alcohol polivinílico y se rotulo por raza, tratamiento y
fecha.
Para la congelación se consideró un tiempo de estabilización. Para esto se colocó las pajuelas en
refrigeración durante 2 horas a 5°C para su proceso de adaptación.
A continuación, se agrego nitrógeno a una altura de 5.5 cm en la rampa de congelación durante unos 3-
5 minutos para que tome temperatura con el nitrógeno toda la rampa, pasado de 3-5 min introducimos
las pajuelas durante 15 min, una vez sumergidas con la ayuda de una pinza se colocó en globets
previamente rotulados, los mismos que fueron introducidos en el termo para su crioconservación a -
196°C.
La descongelación del semen se realizó mediante un termo con agua a temperatura de 37°C se colocaron
las pajillas previamente congelas y se las dejo por 60 segundos, se las secó meticulosamente para evitar
el contacto del semen con el agua. Se realizó cortes en ambos lados de la pajilla y se lo tranfiere a un
tubo Eppendorf rotulado y se coloca en la platina térmica (37°C).
Por otro lado, se evaluó la integridad de la membrana, se realizó una mezcla de 20μl de semen en 100μl
de Host en un tubo Eppendorf y se incubo en la platina térmica a 37°C durante 45 minutos. Para el
análisis microscópico, se colocaron 10μl de la muestra en un portaobjeto y se cubrió con un
cubreobjetos, se observa con un lente de 40x.
pág. 10065
Los espermatozoides que presenten una torsión en el flagelo helicoidal son positivos al Test de Host.
Con respecto, a la prueba de vitalidad, se tomó 3μl de la tinción eosina-nigrosina y 3μl de semen.
Posteriormente, se colocaron en un portaobjetos donde se incorporaron mediante un frotis, el mismo se
lo dejo secar por unos minutos y se procedió al análisis microscópico en el cual se observó un mínimo
de 100 espermatozoides en diferentes campos. Los espermatozoides muertos presentan la coloración
fucsia o rosada y los vivos de color transparente.
Para la prueba de viabilidad se empleó una tinción fluorescente. En un tubo Eppendorf cubierto con
papel aluminio se añadió 50μl de semen y 1μl de yoduro de propidio, el cual se lo incubo durante 5
minutos. A continuación, con una micropipeta se tomó 5 μl de la mezcla y se realizó un frotis, el cual
se analizó mediante un microscopio de fluorescencia con lente de 40x y con disco 1. Los
espermatozoides que se tiñen de rojo son los que presenta problemas en la integridad de la membrana.
De la misma manera se evaluó funcionalidad mitocondrial, se colocó en un tubo Eppendorf 50 μl de
semen y 1μl de rodamina 123, lo cual se dejó incubar por 15 minutos en la platina térmica, se realizó
un frotis con la preparación y se examinó mediante un microscopio fluorescente (lente 40x y disco 3),
los que se tiñen de verde presentan funcionalidad mitocondrial.
Finalmente, se evaluaron diversos parámetros de la calidad del semen mediante el sistema CASA
(Motilidad, VCL, VAP, VSL, STR, LIN, WOB, ALH Y BCF) , para este anilisis se utilizó un
portaobjetos en el cual se colocó 5ul de cada muestra y se cubrió con un cubre objetos, capturando 3
campos por muestra.
ANÁLISIS DE DATOS
Para la comparación de los tratamientos se utilizó un análisis de varianza (ADEVA) a un nivel de
significancia 5% en las variables y una prueba multiparamétrica (post-hoc) de Tukey. Se analizaron dos
modelos de una entrada. El primero considera el momento (Fresco x Descongelado) y segundo el efecto
de los tratamientos (1uM, 2uM y 5uM) post congelación. Todas las pruebas estadísticas fueron
procesadas en el paquete estadístico Jamovi (Jamoviproject, 2022).
pág. 10066
RESULTADOS Y ANÁLISIS
Tabla 1. Análisis de varianzas, entre Tratamientos y entre Momentos
Tramiento
Testigo
1 uM
2uM
5uM
Valor p
Valor p
Momento
Fresco
Descongelado
Fresco
Descongelado
Fresco
Descongelado
Fresco
Descongelado
Momento
Tratamientos
EOSINA
Promedio
81.9
34.5
78.2
35.2
81.7
35.0
78.5
25.6
< .001
> .05
DE
15.4
12.7
25.6
15.8
25.4
21.7
27.3
19.3
HOST
Promedio
29.4
38.4
24.2
42.1
19.7
36.6
25.8
40.2
< .001
> .05
DE
20.6
12.0
15.8
13.9
9.87
10.00
10.3
13.2
IODURO
Promedio
65.8
59.4
61.3
60.6
62.1
61.1
64.9
60.1
0.009
> .05
DE
5.44
4.15
9.01
2.93
12.8
3.19
6.32
3.07
RODAMIDA
Promedio
-
62.9
-
63.8
-
62.4
-
62.6
> .05
DE
-
3.05
-
4.32
-
3.12
-
3.08
PROGRESIVOS
Promedio
32.0
17.6
40.3
19.7
30.6
17.5
31.6
17.7
< .001
> .05
DE
10.1
8.40
30.0
8.72
12.0
9.07
9.99
7.71
NO
PROGRESIVOS
Promedio
56.2
25.3
59.8
31.3
53.2
24.8
55.5
28.3
< .001
> .05
DE
10.8
10.3
28.6
12.0
12.8
8.24
10.1
11.9
INMOVILES
Promedio
11.8
57.1
17.5
49.0
16.3
57.6
13.0
53.9
< .001
> .05
DE
8.85
12.6
17.8
15.3
8.23
14.8
7.82
18.9
VCL
Promedio
90.0
49.0
89.0
50.4
81.7
47.5
82.0
48.3
< .001
> .05
DE
24.1
16.9
33.0
12.2
23.8
21.5
30.5
24.1
VAP
Promedio
46.3
24.1
45.9
24.9
42.6
23.8
42.1
23.0
< .001
> .05
DE
13.0
8.39
17.1
4.21
14.9
11.3
16.0
12.2
VSL
Promedio
30.9
15.8
30.9
16.3
28.8
16.6
27.1
15.8
< .001
> .05
DE
10.2
7.18
14.7
3.67
14.5
9.42
12.6
9.95
STR
Promedio
59.1
53.8
58.5
56.0
55.1
53.7
55.6
55.2
0.194
> .05
DE
6.65
10.1
11.5
9.62
11.1
10.6
11.1
10.4
LIN
Promedio
33.2
29.5
33.3
32.3
30.8
30.8
31.2
30.0
0.444
> .05
DE
6.14
12.2
9.56
13.2
8.58
13.5
8.38
11.7
ALH
Promedio
2.30
1.38
2.23
1.43
2.05
1.32
2.11
1.36
< .001
> .05
DE
0.494
0.340
0.631
0.278
0.403
0.392
0.579
0.470
BCF
Promedio
10.9
5.01
10.8
5.31
10.2
5.08
10.2
5.29
< .001
> .05
DE
3.27
2.16
3.87
1.51
3.83
2.89
4.18
3.43
El cuadro 1 nos enseña las diferencias estadísticas para las pruebas de cinética, permeabilidad y
progresividad tanto para momento como tratamiento. Donde existen diferencias significativas para los
momentos en permeabilidad, progresividad y en algunos de la cinética. un análisis preliminar de los
mismos. Por otro lado, cuando comparamos entre tratamientos vemos que no existe diferencias
significativas (P>0,05) tanto para cinética, permeabilidad y progresividad.
pág. 10067
Figura 1: Distribución de la respuesta de tinciones.
La figura 1 demuestra las tinciones Yoduro de Propidio, Host, Rodamina y Eosina, se observa que no
existe diferencias significativas (P>0,05) para los tratamientos por lo que los intervalos de confianza
coinciden en la distribución observada.
Figura 2: Distribución de la respuesta de progresivos.
La figura 2 demuestra los progresivos, no progresivos e inmóviles y se observa que no existe diferencias
significativas (P>0,05) para los tratamientos por lo que los intervalos de confianza coinciden en la
distribución observada.
pág. 10068
Figura 3: Distribución de la respuesta del sistema CASA.
La figura 3 demuestra VCL, VAP, STR, LIN, VSL,ALH, BCF y se observa que no existe diferencias
significativas para los tratamientos por lo que los intervalos de confianza coinciden en la distribución
observada.
DISCUSIÓN
Una vez garantizado la homogeneidad de las muestras se pudo trabajar con todas las razas y compararlas
debido a que no presentan diferencias significativas y sus parámetros coinciden con los de la especie.
La pruebas de permeabilidad sirven para poder observar el efecto de aditivos como los antioxidantes en
pág. 10069
las células espermáticas
En este campo las pruebas de Yoduro de propidio (PI) utilizados para evaluar la integridad de la
membrana celular, es decir la condición del espermatozoide, se da porque el reactivo penetra la célula
y se tornara de color rojo, lo que indica la perdida de viabilidad, las muestras, donde la investigación
demuestra que en todos los casos estos valores sobrepasan el 60%. Estos valores de viabilidad son
superiores a lo reginales reportados por Payares et al., (2018) aunque difieren también con los de
Carvajal et al., (2017), quienes reportan mejores valores que los que se presentan en este estudio y lo
que conlleva a afirmar el buen estado reproductivo de los animales que se le tomo la muestra y la
influencia que tiene la raza y el sistema de cianza sobre la calidad espermática (García, 2014).
El Test de Host (Prochowska et al., 2022), consiste en colocar los espermatozoides a un medio de
presión hiposmótica más baja que la fisiológica, lo que causa entrada de agua hacia el interior de la
célula, la misma que provoca un hinchamiento y enrrollamiento del flajelo en los espermatozoides con
la membrana plasmática integra.
Esosina-nigrosina se utiliza para determinar la viabilidad, a través de la integridad de la membrana, la
eosina penetra las células únicamente cuando existe dano en la membrana, mientras que las intactas no
adquieren color (Tanga et al., 2021).
Cabe recalcar en este caso la importancia de realizar los tres test para poder afirmar que existe calidad
espermática dado que la motilidad medida y no relacionada con la integralidad de la membrana y la
viabiliadad conduce a errores en la interpretación de la muestra, donde nuestro estudio reafirma de
manera integral que a estas dosis el efecto de la Coenzima Q10 es nulo, contrarrestando lo que
Loja,(2024) ,encontró en sus muestras donde el semen perdó toda su vitalidad tras el uso de esta
molécula, pudiendo afrimar que la CoQ10, no es citotóxica postcongelación a dosis menores y
reafirmando lo que evaluó Cruz, (2024) en el efecto de la coenzima Q10 en dosis de ( 0,2mM; 0,4mM;
0,6mM; 0,8mM) y que indican que las concentraciones de 0,6mM Y 0,8mM de CoQ10 son óptimas
para preservar la calidad del semen, lo que implica que no causa efectos nocivos o letales, aunque ella
lo evaluó en refrigeración.
pág. 10070
En cuanto a la Rodamina que es un método de tinción fluorescente que evalúa la actividad mitocondrial
de los espermatozoides, que al ser permeable ingresa y emite fluorescencia verde indicando
funcionalidad mitocondrial (Ávalos et al., 2018), en el caso de esta invesrigación no hubo diferencias
entre tratamientos por lo que no podemos afirmar que la coenzima activo la mitocondria espermática
pudiendo deberse a la baja concentración del aditivo o a la permeabilidad de la membrana. La
permeabilidad de la membrana es la capacidad que tiene la membrana celular para permitir el paso de
sustancias, esta es selectiva/permeable lo que quiere decir que permite el paso de algunas sustancias,
(Nordzieke & Medraño-Fernandez, 2018), dado que la literatura indica que la mitocondria, situada en
la pieza media (la parte intermedia del espermatozoide), es el organelo que deberia reflejar actividad de
la CoQ10.
La CoQ10 actúa a nivel orgánico y celular; y en los espermatozoides, su principal función es activar la
producción de ATP en las mitocondrias, ya que optimiza la energía y mejora la motilidad y capacitación
espermática. Sin embargo, depende de la absorción adecuada y la funcionalidad de los transportadores
celulares, lo que puede varias entre especie (Tironi et al., 2024).
La membrana plasmática de los espermatozoides ovinos difiere de otras especies como bovinos y
humanos, ya que el espermatozoide ovino posee niveles muy elevados de fosfolípidos y ácidos grasos
poliinsaturados/saturados y niveles bajos de colesterol que podrian influir en la sensibilidad de la
membrana plasmática al daño (Gautier & Aurich, 2022).
Por otro lado, tenemos que Masoudi et al., (2018) evaluó el efecto de diferentes concentraciones de
CoQ10 (1, 2, 5 y 10 uM) en el extensor Lake para la crioconservación de semen de gallo. Los resutados
indican que la suplementación del extensor Lake con 1 y 2 uM de CoQ10 mejora la calidad de los
espermatozoides después del proceso de congelación-descongelación ya que resulto en una mayor
viabilidad espermática, motilidad total y progresiva, la funcionalidad de la membrana, además
redujeron la peroxidación lipídica de los espermatozoides congelados. En base a esto se justifica
ahondar en los efectos de esta molécula en otras especies a través del tiempo, dosis y método de adición,
como una biotecnología reproductiv prometedora, siendo este trabajo una línea base para generar
nuevas variables.
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En cuanto a la coenzima Q10 se ha demostrado sus beneficios sobre la función ovárica en un modelo
de ratón con insuficiencia ovárica inducida por vinilciclohexeno ya que la CoQ10 no solo estimula la
diferenciación de las células madre ovárica, sino que también mejora la calidad de los ovocitos, aumenta
la producción hormonal y reduce el estrés oxidativo Lee et al., (2021), es decir que si cumple una
funcionalidad en células germinales de mamiferos.
Además, Hernández‐Camacho et al., (2024) demostró que la suplementación prenatal con coenzima
Q10 puede prevenir la disfunción muscular en enfermedades mitocondriales, utilizó un modelo animal
que representa la misma mutación genética que afecta a pacientes humanos, los ratones con esta
mutación presentaban defectos en el desarrollo embrionario, una reducción del tamano corporal y
problemas musculares, como pérdida de estructura y disminución de función, que se agravaban con la
edad.
Asimismo, la capacidad de respiración mitocondrial en el músculo de estos ratones estaba disminuida,
con la consiguiente pérdida en la capacidad para obtener energía. Demostrando, que la administraci;on
prenatal de CoQ10 fue capaz de prevenir estos danos, permitiendo a los animales envejecer son mostrar
signos de disfunción muscular.
CONCLUSIONES
No Tras evaluar el efecto de las concentraciones de 1uM, 2 uM, y 5 uM de coenzima Q10
postcongelación se concluyó que estas dosis no tienen un impacto significativo tanto positivo como
negativo sobre los parámetros que determinan la calidad espermática del ovino, y que de acuerdo a lo
estudiado en otras investigaciones esta molécula puede ser aprovechada a mayores dosis aquellos.
REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS
Aibazov, А.-М. М. (2022). Results and prospects of the USE of assisted reproductive technologies in
reproductive of small ruminants's animal. Sheep, goats, woolen business, 2, 8-14.
https://doi.org/10.26897/2074-0840-2022-2-8-14
Ávalos, A., González, J., Vargas, A., & Herrera, J. (2018). Recolección y manipulación seminal in vitro.
Carvajal, M., Cortés, H., Manrique, C., & Grajales, H. (2017). Evaluación de los parámetros de calidad
seminal y cinemática espermática en tres razas ovinas de lana en condiciones de trópico alto
colombiano. Revista de Medicina Veterinaria, 36, 49-61. https://doi.org/10.19052/mv.5171
pág. 10072
Choi, J., Alkhoury, L., Urbano, L. F., Masson, P., VerMilyea, M., & Kam, M. (2022). An assessment
tool for computer-assisted semen analysis (CASA) algorithms. Scientific Reports, 12(1), 16830.
https://doi.org/10.1038/s41598-022-20943-9
Cruz, S. V. (2024). Efecto de la concentración de la coenzima Q10 en la refrigeración de semen ovino.
Universidad Católica de Cuenca. https://dspace.ucacue.edu.ec/handle/ucacue/18466
García, W. C. (with Palomo Peiró, M. J.). (2014). Optimización de los protocolos de crioconservación
de semen ovino de las razas autóctonas en peligro de extinción xisqueta y aranesa. Universidad
Autónoma de Barcelona.
Gautier, C., & Aurich, C. (2022). “Fine feathers make fine birds” – The mammalian sperm plasma
membrane lipid composition and effects on assisted reproduction. Animal Reproduction
Science, 246, 106884. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2021.106884
Hernández‐Camacho, J. D., Vicente‐García, C., Ardila‐García, L., Padilla‐Campos, A., López‐Lluch,
G., Santos‐Ocaña, C., Zammit, P. S., Carvajal, J. J., Navas, P., & Fernández‐Ayala, D. J. M.
(2024). Prenatal and progressive coenzyme Q10 administration to mitigate muscle dysfunction
in mitochondrial disease. Journal of Cachexia, Sarcopenia and Muscle, 15(6), 2402-2416.
https://doi.org/10.1002/jcsm.13574
Kahwage, P. R., Esteves, S. N., Jacinto, M. A. C., Barioni Junior, W., Machado, R., Romanello, N.,
Passeri, L. F., De Mendonça, K. L., & García, A. R. (2018). Assessment of body and scrotal
thermoregulation and semen quality of hair sheep rams throughout the year in a tropical
environment. Small Ruminant Research, 160, 72-80.
https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2018.01.015
Lee, H. J., Park, M. J., Joo, B. S., Joo, J. K., Kim, Y. H., Yang, S. W., Kim, C.-W., & Kim, K. H. (2021).
Effects of coenzyme Q10 on ovarian surface epithelium-derived ovarian stem cells and ovarian
function in a 4-vinylcyclohexene diepoxide-induced murine model of ovarian failure.
Reproductive Biology and Endocrinology, 19(1), 59. https://doi.org/10.1186/s12958-021-
00736-x
Loja, E. T. (2024). Efecto de la concentración de la coenzima Q10 en semen ovino post congelación.
Universidad Católica de Cuenca. https://dspace.ucacue.edu.ec/handle/ucacue/18008
pág. 10073
Masoudi, R., Sharafi, M., Zare Shahneh, A., Kohram, H., Nejati-Amiri, E., Karimi, H., Khodaei-
Motlagh, M., & Shahverdi, A. (2018). Supplementation of extender with coenzyme Q10
improves the function and fertility potential of rooster spermatozoa after cryopreservation.
Animal Reproduction Science, 198, 193-201. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2018.09.019
Nordzieke, D. E., & Medraño-Fernandez, I. (2018). The Plasma Membrane: A Platform for Intra- and
Intercellular Redox Signaling. Antioxidants, 7(11), 168. https://doi.org/10.3390/antiox7110168
Payares, L., Hernández, W., Rugeles, C., & Vergara, O. (2018). Edad a la pubertad, desarrollo corporal
y testicular del ovino criollo (Ovis aries) de pelo En Córdova-Colombia. XXVlll (2), 139-145.
Prochowska, S., Niżański, W., & Fontbonne, A. (2022). Hypo-Osmotic Swelling Test (HOST) for Feline
Spermatozoa: The Simplified Procedure and the Aspect of Sperm Morphology. Animals, 12(7),
903. https://doi.org/10.3390/ani12070903
Rodríguez, S. (2024). Evaluación de la calidad espermática de semen porcino criopreservado en
diferentes niveles de coenzima Q10. (2024). Escuela superior politécnica de Chimborazo
facultad de ciencias pecuarias.http://dspace.espoch.edu.ec/handle/123456789/23037
Ruiz, L., Sandoval M., R., & Santiani A., A. (2015). Evaluación de la Calidad Espermática del Semen
Ovino Posdescongelación al Emplear Dos Fuentes Energéticas y Dos Crioprotectores. Revista
de Investigaciones Veterinarias del Perú, 26(1), 49. https://doi.org/10.15381/rivep.v26i1.10942
Sharafi, M., Shahneh, A. Z., & Masoudi. (2019). Effects of CoQ10 on the quality of ram sperm during
cryopreservation in plant and animal based extenders. Animal Reproduction Science, 208,
106103. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2019.06.015
Tanga, B. M., Qamar, A. Y., Raza, S., Bang, S., Fang, X., Yoon, K., & Cho, J. (2021). Semen evaluation:
Methodological advancements in sperm quality-specific fertility assessment — A review.
Animal Bioscience, 34(8), 1253-1270. https://doi.org/10.5713/ab.21.0072
Tironi, S. M. T., Sitó-Silva, L., De Camillo, B. L., Denadai, R., Silva, A. L. A. D., De Paula Freitas-
Dell’Aqua, C., Junior, J. A. D., De Oliveira, R. A., Souza, M. I. L., & Oba, E. (2024). Use of
coenzyme Q-10 to improve the pregnancy rate in sheep. Animal Reproduction Science, 266,
107498. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2024.107498
pág. 10074
Whitesell, K., Stefanovski, D., McDonnell, S., & Turner, R. (2020). Evaluation of the effect of
laboratory methods on semen analysis and breeding soundness examination (BSE)
classification in stallions. Theriogenology, 142, 67-76.
https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2019.09.035
Yánez, I., Catalán, J., Rodríguez, J. E., Miró, J., & Yeste, M. (2022). Advances in sperm
cryopreservation in farm animals: Cattle, horse, pig and sheep. Animal Reproduction Science,
246, 106904. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2021.106904
