ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO DE ARTRÓPODOS
CAPTURADOS EN PLANTAS DE BANANO DE LA
AGRÍCOLA JORGE XAVIER
MICROBIOLOGICAL ANALYSIS OF ARTHROPODS CAPTURED
IN BANANA PLANTS AT AGRÍCOLA JORGE XAVIER
Camila Yahela Vega Chavez
Universidad Técnica de Machala, Ecuador
Erick Patricio Espinoza Navarrete
Universidad Técnica de Machala, Ecuador
José Nicasio Quevedo Guerrero
Universidad Técnica de Machala, Ecuador
Edison Fabricio Vera Cruz
DITABA, Ecuador
pág. 4653
DOI: https://doi.org/10.37811/cl_rcm.v9i4.19108
Análisis Microbiológico de Artrópodos Capturados en Plantas de Banano
de la Agrícola Jorge Xavier
Camila Yahela Vega Chavez1
cvega4@utmachala.edu.ec
https://orcid.org/0009-0004-8145-6719
Universidad Técnica de Machala
Ecuador
Erick Patricio Espinoza Navarrete
eespinoza11@utmachala.edu.ec
https://orcid.org/0009-0007-5997-0078
Universidad Técnica de Machala
Ecuador
José Nicasio Quevedo Guerrero
jquevedo@utmachala.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-8974-5628
Universidad Técnica de Machala
Ecuador
Edison Fabricio Vera Cruz
verafabricio22@gmail.com
https://orcid.org/0000-0002-7950-5049
Departamento de Investigaciones
Técnicas Agronómicas y biológicas de
AgriSum DITABA
Ecuador
RESUMEN
El presente estudio tuvo como objetivo identificar y caracterizar la microbiota bacteriana y fúngica
asociada a artrópodos recolectados en cultivos de banano en la Agrícola Jorge Xavier, ubicada en la
provincia de El Oro, Ecuador. Mediante análisis morfológico, uso de claves taxonómicas y tinción de
Gram, se logró aislar bacterias de los géneros Bacillus, Klebsiella y Enterobacter, así como hongo del
género Penicillium, presentes en el exoesqueleto o tracto digestivo de los artrópodos. Entre las especies
identificadas destaca Bacillus subtilis, con potencial en la promoción del crecimiento vegetal, y
Klebsiella spp. o Enterobacter cloacae, que representan un posible riesgo fitosanitario. Los artrópodos
analizados incluyeron milpiés, arañas lobo, gusanos cola de rata, picudos negros y moscas carroñeras,
cada uno con un perfil microbiano característico. La metodología consideró la recolección de artrópodos
en campo, lavado con agua estéril, dilución seriada y siembra en medios como PDA y agar nutritivo,
complementado con observaciones microscópicas. El hallazgo de microorganismos con funciones tanto
benéficas como patógenas evidencia la compleja relación entre artrópodos y el ecosistema agrícola.
Estos análisis demuestran la importancia de monitorear vectores biológicos e incorporar esta
información en estrategias sostenibles de manejo integrado de plagas (MIP).
Palabras clave: artrópodos, vectores, microbiota, banano
1 Autor principal
Correspondencia: cvega4@utmachala.edu.ec
DOI: https://doi.org/10.37811/cl_rcm.v9i4.19108
Análisis Microbiológico de Artrópodos Capturados en Plantas de Banano
de la Agrícola Jorge Xavier
Camila Yahela Vega Chavez1
cvega4@utmachala.edu.ec
https://orcid.org/0009-0004-8145-6719
Universidad Técnica de Machala
Ecuador
Erick Patricio Espinoza Navarrete
eespinoza11@utmachala.edu.ec
https://orcid.org/0009-0007-5997-0078
Universidad Técnica de Machala
Ecuador
José Nicasio Quevedo Guerrero
jquevedo@utmachala.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-8974-5628
Universidad Técnica de Machala
Ecuador
Edison Fabricio Vera Cruz
verafabricio22@gmail.com
https://orcid.org/0000-0002-7950-5049
Departamento de Investigaciones
Técnicas Agronómicas y biológicas de
AgriSum DITABA
Ecuador
RESUMEN
El presente estudio tuvo como objetivo identificar y caracterizar la microbiota bacteriana y fúngica
asociada a artrópodos recolectados en cultivos de banano en la Agrícola Jorge Xavier, ubicada en la
provincia de El Oro, Ecuador. Mediante análisis morfológico, uso de claves taxonómicas y tinción de
Gram, se logró aislar bacterias de los géneros Bacillus, Klebsiella y Enterobacter, así como hongo del
género Penicillium, presentes en el exoesqueleto o tracto digestivo de los artrópodos. Entre las especies
identificadas destaca Bacillus subtilis, con potencial en la promoción del crecimiento vegetal, y
Klebsiella spp. o Enterobacter cloacae, que representan un posible riesgo fitosanitario. Los artrópodos
analizados incluyeron milpiés, arañas lobo, gusanos cola de rata, picudos negros y moscas carroñeras,
cada uno con un perfil microbiano característico. La metodología consideró la recolección de artrópodos
en campo, lavado con agua estéril, dilución seriada y siembra en medios como PDA y agar nutritivo,
complementado con observaciones microscópicas. El hallazgo de microorganismos con funciones tanto
benéficas como patógenas evidencia la compleja relación entre artrópodos y el ecosistema agrícola.
Estos análisis demuestran la importancia de monitorear vectores biológicos e incorporar esta
información en estrategias sostenibles de manejo integrado de plagas (MIP).
Palabras clave: artrópodos, vectores, microbiota, banano
1 Autor principal
Correspondencia: cvega4@utmachala.edu.ec
pág. 4654
Microbiological Analysis of Arthropods Captured in Banana Plants at
Agrícola Jorge Xavier
ABSTRACT
The aim of this study was to identify and characterize the bacterial and fungal microbiota associated
with insects collected from banana crops at Agrícola Jorge Xavier, located in El Oro province, Ecuador.
Through morphological analysis, taxonomic keys, and Gram staining, bacteria belonging to the genera
Bacillus, Klebsiella, and Enterobacter, as well as fungi from the genus Penicillium, were isolated from
the exoskeleton or digestive tract of the insects. Among the species identified, Bacillus subtilis stood
out for its potential to promote plant growth, while Klebsiella spp. and Enterobacter cloacae were
identified as potential phytosanitary risks. The Arthropod analyzed included millipedes, wolf spiders,
rat-tailed maggots, black weevils and carrion flies, each exhibiting a distinct microbial profile. The
methodology included insect collection in the field, washing with sterile water, serial dilutions, and
inoculation in culture media such as PDA and nutrient agar, complemented by detailed microscopic
observations. The detection of microorganisms with both beneficial and pathogenic functions highlights
the complex interaction between insects and the agricultural ecosystem. These findings underscore the
importance of monitoring biological vectors and incorporating this information into sustainable
strategies for integrated pest management (IPM)."
Keywords: vector, insects, microbial, banana
Artículo recibido 05 julio 2025
Aceptado para publicación: 25 julio 2025
Microbiological Analysis of Arthropods Captured in Banana Plants at
Agrícola Jorge Xavier
ABSTRACT
The aim of this study was to identify and characterize the bacterial and fungal microbiota associated
with insects collected from banana crops at Agrícola Jorge Xavier, located in El Oro province, Ecuador.
Through morphological analysis, taxonomic keys, and Gram staining, bacteria belonging to the genera
Bacillus, Klebsiella, and Enterobacter, as well as fungi from the genus Penicillium, were isolated from
the exoskeleton or digestive tract of the insects. Among the species identified, Bacillus subtilis stood
out for its potential to promote plant growth, while Klebsiella spp. and Enterobacter cloacae were
identified as potential phytosanitary risks. The Arthropod analyzed included millipedes, wolf spiders,
rat-tailed maggots, black weevils and carrion flies, each exhibiting a distinct microbial profile. The
methodology included insect collection in the field, washing with sterile water, serial dilutions, and
inoculation in culture media such as PDA and nutrient agar, complemented by detailed microscopic
observations. The detection of microorganisms with both beneficial and pathogenic functions highlights
the complex interaction between insects and the agricultural ecosystem. These findings underscore the
importance of monitoring biological vectors and incorporating this information into sustainable
strategies for integrated pest management (IPM)."
Keywords: vector, insects, microbial, banana
Artículo recibido 05 julio 2025
Aceptado para publicación: 25 julio 2025
pág. 4655
INTRODUCCIÓN
El cultivo del banano (Musa x paradisiaca L.) es de vital importancia en diversas regiones tropicales y
subtropicales del mundo, desempeñando un papel crucial en la seguridad alimentaria y la economía de
países productores como Uganda, Ecuador y Colombia ( Rossmann et al., 2012). Sin embargo, este
cultivo enfrenta múltiples desafíos fitosanitarios debido a la presencia de diversos patógenos fúngicos
y bacterianos que afectan tanto a la calidad como la cantidad de la producción. La agricultura moderna
enfrenta diversos desafíos debido a la presencia de microorganismo que afectan la calidad y producción
de cultivos. El cultivo de banano ha sido ampliamente afectado por hongos y bacterias que influyen en
su desarrollo y rendimiento (Acaro y Cevallos, 2025). Los artrópodos, en su papel como vectores
biológicos pueden trasportar este microorganismo y favorecer su diseminación en las plantaciones
(Enoh et al., 2024). La identificación y análisis de hongos y bacterias presentes en los artrópodos
recolectados en la finca Jorge Xavier es fundamental para comprender la dinámica microbiana y
proponer estrategias de manejo sostenible.
Los hongos y bacterias asociados a artrópodos pueden clasificarse en diferentes grupos según su
relación con el hospedador. Algunos de estos microrganismos tienen funciones benéficas, como los
hongos entomopatógenos, que pueden ser utilizados para el control biológico de plagas (Kisaakye et
al., 2021). Por otro lado, ciertas bacterias pueden contribuir a la propagación de enfermedades,
afectando negativamente el cultivo de banano (Torres et al., 2009). Entre estas técnicas, la tinción de
Gram se emplea para la clasificación de bacterias de Gram Positivas (+) y Gram Negativas (-),
permitiendo identificar características estructurales de la pared celular que influyen en su resistencia a
antibióticos y su papel en relación insecto-microorganismo. Con esta investigación, se busca generar
información relevante sobre la presencia y distribución de hongos y bacterias en los artrópodos, lo que
permitirá diseñar estrategias de manejo integrado (MIP) y mejorar la sostenibilidad del cultivo de
banano. Los microorganismos asociados con el banano incluyen una amplia gama de bacterias y hongos
que pueden desempeñar funciones benéficas o perjudiciales para la planta. Algunas bacterias, como las
del género Enterobacteriaceae, están ampliamente presentes en la interior de la planta del banano y
pueden influir en la salud de la planta, actuando como agente biocontrolador facilitando la aparición de
enfermedades ( Rossmann et al., 2012).
INTRODUCCIÓN
El cultivo del banano (Musa x paradisiaca L.) es de vital importancia en diversas regiones tropicales y
subtropicales del mundo, desempeñando un papel crucial en la seguridad alimentaria y la economía de
países productores como Uganda, Ecuador y Colombia ( Rossmann et al., 2012). Sin embargo, este
cultivo enfrenta múltiples desafíos fitosanitarios debido a la presencia de diversos patógenos fúngicos
y bacterianos que afectan tanto a la calidad como la cantidad de la producción. La agricultura moderna
enfrenta diversos desafíos debido a la presencia de microorganismo que afectan la calidad y producción
de cultivos. El cultivo de banano ha sido ampliamente afectado por hongos y bacterias que influyen en
su desarrollo y rendimiento (Acaro y Cevallos, 2025). Los artrópodos, en su papel como vectores
biológicos pueden trasportar este microorganismo y favorecer su diseminación en las plantaciones
(Enoh et al., 2024). La identificación y análisis de hongos y bacterias presentes en los artrópodos
recolectados en la finca Jorge Xavier es fundamental para comprender la dinámica microbiana y
proponer estrategias de manejo sostenible.
Los hongos y bacterias asociados a artrópodos pueden clasificarse en diferentes grupos según su
relación con el hospedador. Algunos de estos microrganismos tienen funciones benéficas, como los
hongos entomopatógenos, que pueden ser utilizados para el control biológico de plagas (Kisaakye et
al., 2021). Por otro lado, ciertas bacterias pueden contribuir a la propagación de enfermedades,
afectando negativamente el cultivo de banano (Torres et al., 2009). Entre estas técnicas, la tinción de
Gram se emplea para la clasificación de bacterias de Gram Positivas (+) y Gram Negativas (-),
permitiendo identificar características estructurales de la pared celular que influyen en su resistencia a
antibióticos y su papel en relación insecto-microorganismo. Con esta investigación, se busca generar
información relevante sobre la presencia y distribución de hongos y bacterias en los artrópodos, lo que
permitirá diseñar estrategias de manejo integrado (MIP) y mejorar la sostenibilidad del cultivo de
banano. Los microorganismos asociados con el banano incluyen una amplia gama de bacterias y hongos
que pueden desempeñar funciones benéficas o perjudiciales para la planta. Algunas bacterias, como las
del género Enterobacteriaceae, están ampliamente presentes en la interior de la planta del banano y
pueden influir en la salud de la planta, actuando como agente biocontrolador facilitando la aparición de
enfermedades ( Rossmann et al., 2012).
pág. 4656
En contraste, patógenos fúngicos como Fusarium oxysporum Cubensis (FOC) representan una de las
amenazas más graves, causando la enfermedad conocida como “mal de panamá”, la cual ha devastado
plantaciones en todo el mundo (Gerda et al., 2011)
Los artrópodos que habitan en las plantaciones de banano pueden actuar como vectores de
microorganismos patógenos, favoreciendo la dimensión de hongos y bacterias dentro del
agroecosistema. Investigaciones recientes han identificado bacterias de los géneros Pseudomonas,
Burkholderia y Serratia, que pueden ser beneficiosas para la planta o, en algunos casos, patógenas.
(Berg et al., 2005). Esto resalta la importancia de estudiar la relación entre los artrópodos y el
microbiota presente en su exoesqueleto y tracto digestivo, para desarrollar estrategias de control
biológico más eficaces en las plantaciones de banano, las aplicaciones de prácticas agronómicas
sostenibles y el uso de microorganismos antagónicos han surgido como estrategias prometedoras para
mitigar los efectos de enfermedades fúngicas y bacterianas. Diversos estudios han demostrado que
ciertos microorganismos pueden competir con patógenos por nutrientes y espacio, reduciendo su
proliferación y limitando su impacto negativo en la producción (Lugtenberg y Kamilova, 2009). Sin
embargo, la identificación y caracterización de estas poblaciones microbianas aún presentan un desafío
significativo. En estudio previos, se han reportado la presencia de hongos como Fusarium oxysporum
Cubensis y Ralstonia solanacearum sp en cultivos de banano, los cuales pueden ser transmitidos por
artrópodos (Acaro y Cevallos, 2025). Se han identificado bacterias que contribuyen a la degradación
de la biomasa y pueden afectar a la salud de las plantas (Viswakethu et al., 2021). En este estudio, se
propone analizar la diversidad microbiana presente en los artrópodos recolectados en la finca Jorge
Xavier mediante técnicas de aislamiento e identificación molecular.
Algunos autores citan metodologías para este análisis que incluye la recolección de artrópodos en
diferentes zonas de la finca, seguida de la extracción e identificación de microorganismos mediante
técnicas microbiológicas y de secuencia genómica (Staley et al., 2019) (Monge et al., 2024). Este
estudio tiene como finalidad caracterizar la diversidad y composición de hongos y bacterias asociadas
a artrópodos recolectados en las plantaciones de banano de la Agrícola Jorge Xavier. A través de un
análisis microbiológico detallado, se busca comprender como estos microorganismos interactúan con
En contraste, patógenos fúngicos como Fusarium oxysporum Cubensis (FOC) representan una de las
amenazas más graves, causando la enfermedad conocida como “mal de panamá”, la cual ha devastado
plantaciones en todo el mundo (Gerda et al., 2011)
Los artrópodos que habitan en las plantaciones de banano pueden actuar como vectores de
microorganismos patógenos, favoreciendo la dimensión de hongos y bacterias dentro del
agroecosistema. Investigaciones recientes han identificado bacterias de los géneros Pseudomonas,
Burkholderia y Serratia, que pueden ser beneficiosas para la planta o, en algunos casos, patógenas.
(Berg et al., 2005). Esto resalta la importancia de estudiar la relación entre los artrópodos y el
microbiota presente en su exoesqueleto y tracto digestivo, para desarrollar estrategias de control
biológico más eficaces en las plantaciones de banano, las aplicaciones de prácticas agronómicas
sostenibles y el uso de microorganismos antagónicos han surgido como estrategias prometedoras para
mitigar los efectos de enfermedades fúngicas y bacterianas. Diversos estudios han demostrado que
ciertos microorganismos pueden competir con patógenos por nutrientes y espacio, reduciendo su
proliferación y limitando su impacto negativo en la producción (Lugtenberg y Kamilova, 2009). Sin
embargo, la identificación y caracterización de estas poblaciones microbianas aún presentan un desafío
significativo. En estudio previos, se han reportado la presencia de hongos como Fusarium oxysporum
Cubensis y Ralstonia solanacearum sp en cultivos de banano, los cuales pueden ser transmitidos por
artrópodos (Acaro y Cevallos, 2025). Se han identificado bacterias que contribuyen a la degradación
de la biomasa y pueden afectar a la salud de las plantas (Viswakethu et al., 2021). En este estudio, se
propone analizar la diversidad microbiana presente en los artrópodos recolectados en la finca Jorge
Xavier mediante técnicas de aislamiento e identificación molecular.
Algunos autores citan metodologías para este análisis que incluye la recolección de artrópodos en
diferentes zonas de la finca, seguida de la extracción e identificación de microorganismos mediante
técnicas microbiológicas y de secuencia genómica (Staley et al., 2019) (Monge et al., 2024). Este
estudio tiene como finalidad caracterizar la diversidad y composición de hongos y bacterias asociadas
a artrópodos recolectados en las plantaciones de banano de la Agrícola Jorge Xavier. A través de un
análisis microbiológico detallado, se busca comprender como estos microorganismos interactúan con
pág. 4657
el cultivo y su entorno, con el fin de desarrollar estrategias de manejo integrado de plagas y
enfermedades que contribuyan a la sostenibilidad del sector bananero.
METODOLOGÍA
La recolección de artrópodos se llevó a cabo en la Agrícola Jorge Xavier, ubicada en la parroquia
Barbones, cantón El Guabo, provincia de El Oro, Ecuador. La plantación se localiza a las coordenadas
geográficas 3.182505° S y 79.860979° O, en el suroeste del Ecuador, es una zona con temperatura
media anual cercana a los 26 °C. El régimen de lluvias en el área presenta un rango anual entre 734 y
1800 mm, mientras que los niveles de humedad relativa varían entre el 74 % en los meses más secos y
el 88 % durante los periodos más húmedos.
El muestreo fue realizado específicamente en el lote 8, fue seleccionado debido a que presentó alta
incidencia de afectación en el cultivo, lo que convierte en un área representativa para el análisis
entomológico y microbiológico. Las actividades de análisis se llevaron a cabo en el laboratorio del
Departamento de Investigación y Desarrollo de Tecnologías Agrícolas y Biológicas (DITABA),
perteneciente a AGRISUM. Este laboratorio está ubicado en el sitio El Vergel, en el kilómetro 1.5 de
la vía El Guabo – Pasaje, cuenta con áreas de trabajo organizadas que permiten ejecutar los
procedimientos de manera eficiente y condiciones adecuadas de seguridad.
Durante el trabajo de campo, Los artrópodos fueron recolectados mediante trampas tipo sánduche, red
entomológica y muestreo directo en materia orgánica en descomposición. Con el fin de asegurar su
viabilidad hasta el momento del análisis, cada espécimen fue almacenado de forma individual en tubos
Falcon estériles de 50 ml. Este nos permitió mantener a los artrópodos con vida durante el proceso de
transporte al laboratorio, además de facilitar el registro preciso del área de recolección correspondiente,
garantizando así la identificación precisa de cada muestra.
Figura 1. Trampas. Figura 2. Toma de muestras en campo Figura 3 Artrópodos capturados
el cultivo y su entorno, con el fin de desarrollar estrategias de manejo integrado de plagas y
enfermedades que contribuyan a la sostenibilidad del sector bananero.
METODOLOGÍA
La recolección de artrópodos se llevó a cabo en la Agrícola Jorge Xavier, ubicada en la parroquia
Barbones, cantón El Guabo, provincia de El Oro, Ecuador. La plantación se localiza a las coordenadas
geográficas 3.182505° S y 79.860979° O, en el suroeste del Ecuador, es una zona con temperatura
media anual cercana a los 26 °C. El régimen de lluvias en el área presenta un rango anual entre 734 y
1800 mm, mientras que los niveles de humedad relativa varían entre el 74 % en los meses más secos y
el 88 % durante los periodos más húmedos.
El muestreo fue realizado específicamente en el lote 8, fue seleccionado debido a que presentó alta
incidencia de afectación en el cultivo, lo que convierte en un área representativa para el análisis
entomológico y microbiológico. Las actividades de análisis se llevaron a cabo en el laboratorio del
Departamento de Investigación y Desarrollo de Tecnologías Agrícolas y Biológicas (DITABA),
perteneciente a AGRISUM. Este laboratorio está ubicado en el sitio El Vergel, en el kilómetro 1.5 de
la vía El Guabo – Pasaje, cuenta con áreas de trabajo organizadas que permiten ejecutar los
procedimientos de manera eficiente y condiciones adecuadas de seguridad.
Durante el trabajo de campo, Los artrópodos fueron recolectados mediante trampas tipo sánduche, red
entomológica y muestreo directo en materia orgánica en descomposición. Con el fin de asegurar su
viabilidad hasta el momento del análisis, cada espécimen fue almacenado de forma individual en tubos
Falcon estériles de 50 ml. Este nos permitió mantener a los artrópodos con vida durante el proceso de
transporte al laboratorio, además de facilitar el registro preciso del área de recolección correspondiente,
garantizando así la identificación precisa de cada muestra.
Figura 1. Trampas. Figura 2. Toma de muestras en campo Figura 3 Artrópodos capturados
pág. 4658
En el laboratorio, los artrópodos se lavaron con 10 ml de agua desionizada esterilizada (SDW). Este
líquido o solución de lavado se diluyó dos veces (10-1 y 10-2) con agua desionizada (SDW)” (Montong
y Salaki, 2020). Como todos los organismos vivos, los microorganismos requieren ciertos nutrientes
básicos y factores físicos para el mantenimiento de su vida, estas necesidades varían según el tipo de
microorganismo y es necesario conocerlas para cultivarlos en el laboratorio. (Martin, 2021).
Una vez en el laboratorio, se procedió a la preparación del medio de cultivo PDA (Papa Dextrosa Agar).
Para ello, se pesaron 39 gramos del medio deshidratado, los cuales fueron disueltos en 1 litro de agua
destilada. La mezcla se calentó hasta alcanzar el punto de ebullición, asegurando así la completa
disolución de los componentes del medio (Atlas, 2010). Posteriormente, se distribuyó en frascos de
vidrio y se esterilizó mediante autoclave a 121 °C durante 15 minutos, procedimiento estándar para la
eliminación de contaminantes microbiológicos (Cappuccino y Welsh, 2008). Una vez esterilizado, en
condiciones asépticas dentro de la cámara de flujo laminar, se vertieron entre 13 y 15 ml del medio en
cajas de Petri estériles, dejándolas secar bajo exposición a luz ultravioleta para evitar contaminaciones
(Buckley et al., 2021). Finalizado este paso, se procedió con la técnica de dilución seriada para el
análisis microbiológico. Los tubos de ensayo fueron colocados en una gradilla, lo que permitió
mantenerlos en posición vertical. Se adicionaron 9,9 ml de agua destilada estéril en el primer tubo y
9ml en los seis tubos restantes (Tortora et al., 2019). Posteriormente, se tomó una muestra de 0,1 ml de
agua con la que se lavó el insecto y se colocó en el primer tubo, donde fue homogéneamente mezclada.
A partir de esta dilución se tomó 1ml y se transfirió al segundo tubo, repitiendo el proceso
sucesivamente hasta el séptimo tubo. De la última muestra se toma el 0,1 ml para inocular en la caja
Petri con medio PDA, realizando la siembra en superficie (Willey et al., 2016). Cada placa fue marcada
con el respectivo código de identificación y la fecha de siembra, lo cual es fundamental para el
monitoreo y análisis de resultados tras el periodo de incubación de aproximadamente una semana.
Los artrópodos fueron clasificados: Miriápodos de la clave Rosa Fernández, Gregory D. Edgecombe,
Gonzalo Giribet, Exploring Phylogenetic Relationships within Myriapoda and the Effects of Matrix
Composition and Occupancy on Phylogenomic Reconstruction Arácnida de la clave Wegner, G. (2014).
A beginner-friendly key to spider families (Araneae) (Revised ed.) (Fernández et al., 2016). IPM
Institute of North America.
En el laboratorio, los artrópodos se lavaron con 10 ml de agua desionizada esterilizada (SDW). Este
líquido o solución de lavado se diluyó dos veces (10-1 y 10-2) con agua desionizada (SDW)” (Montong
y Salaki, 2020). Como todos los organismos vivos, los microorganismos requieren ciertos nutrientes
básicos y factores físicos para el mantenimiento de su vida, estas necesidades varían según el tipo de
microorganismo y es necesario conocerlas para cultivarlos en el laboratorio. (Martin, 2021).
Una vez en el laboratorio, se procedió a la preparación del medio de cultivo PDA (Papa Dextrosa Agar).
Para ello, se pesaron 39 gramos del medio deshidratado, los cuales fueron disueltos en 1 litro de agua
destilada. La mezcla se calentó hasta alcanzar el punto de ebullición, asegurando así la completa
disolución de los componentes del medio (Atlas, 2010). Posteriormente, se distribuyó en frascos de
vidrio y se esterilizó mediante autoclave a 121 °C durante 15 minutos, procedimiento estándar para la
eliminación de contaminantes microbiológicos (Cappuccino y Welsh, 2008). Una vez esterilizado, en
condiciones asépticas dentro de la cámara de flujo laminar, se vertieron entre 13 y 15 ml del medio en
cajas de Petri estériles, dejándolas secar bajo exposición a luz ultravioleta para evitar contaminaciones
(Buckley et al., 2021). Finalizado este paso, se procedió con la técnica de dilución seriada para el
análisis microbiológico. Los tubos de ensayo fueron colocados en una gradilla, lo que permitió
mantenerlos en posición vertical. Se adicionaron 9,9 ml de agua destilada estéril en el primer tubo y
9ml en los seis tubos restantes (Tortora et al., 2019). Posteriormente, se tomó una muestra de 0,1 ml de
agua con la que se lavó el insecto y se colocó en el primer tubo, donde fue homogéneamente mezclada.
A partir de esta dilución se tomó 1ml y se transfirió al segundo tubo, repitiendo el proceso
sucesivamente hasta el séptimo tubo. De la última muestra se toma el 0,1 ml para inocular en la caja
Petri con medio PDA, realizando la siembra en superficie (Willey et al., 2016). Cada placa fue marcada
con el respectivo código de identificación y la fecha de siembra, lo cual es fundamental para el
monitoreo y análisis de resultados tras el periodo de incubación de aproximadamente una semana.
Los artrópodos fueron clasificados: Miriápodos de la clave Rosa Fernández, Gregory D. Edgecombe,
Gonzalo Giribet, Exploring Phylogenetic Relationships within Myriapoda and the Effects of Matrix
Composition and Occupancy on Phylogenomic Reconstruction Arácnida de la clave Wegner, G. (2014).
A beginner-friendly key to spider families (Araneae) (Revised ed.) (Fernández et al., 2016). IPM
Institute of North America.
pág. 4659
Diptera de la calve Jarlan, A., Oliveira, D. de, & Gingras, J. (1997). Pollination by Eristalis tenax
(Diptera: Syrphidae) and seed set of greenhouse sweet pepper
Coleóptera de la clave Kuschel, G. (1972). The Cosmopolites banana weevils (Coleoptera:
Curculionidae). Pacific Insects
Diptera de la calve Mandal, S. (2023). Short notes on bionomics and taxonomy of Sarcophaga
(Parasarcophaga) albiceps (Meigen, 1826): A fly of veterinary importance.
Descripción de los artrópodos capturados y analizados en laboratorio
Tabla 1
Nombre común Mil pies rayados
Nombre científico Anadenobolus monilicornis
Código Mr
Tabla 2
Nombre común Araña lobo
Nombre científico Hogna carolinesis
Código Al
Tabla 3
Nombre común Gusano cola de rata
Nombre científico Eristalis tenax
Código Gr
Diptera de la calve Jarlan, A., Oliveira, D. de, & Gingras, J. (1997). Pollination by Eristalis tenax
(Diptera: Syrphidae) and seed set of greenhouse sweet pepper
Coleóptera de la clave Kuschel, G. (1972). The Cosmopolites banana weevils (Coleoptera:
Curculionidae). Pacific Insects
Diptera de la calve Mandal, S. (2023). Short notes on bionomics and taxonomy of Sarcophaga
(Parasarcophaga) albiceps (Meigen, 1826): A fly of veterinary importance.
Descripción de los artrópodos capturados y analizados en laboratorio
Tabla 1
Nombre común Mil pies rayados
Nombre científico Anadenobolus monilicornis
Código Mr
Tabla 2
Nombre común Araña lobo
Nombre científico Hogna carolinesis
Código Al
Tabla 3
Nombre común Gusano cola de rata
Nombre científico Eristalis tenax
Código Gr
pág. 4660
Tabla 4
Tabla 5
Tinción de Gram
Aplicamos la tinción de Gram para la identificación y clasificación de bacterias aisladas de los
artrópodos recolectados en el cultivo de banano. Esta prueba nos permite diferenciarlas en dos grupos:
Gram positivas (+) y Gram negativas(-) , según la estructura de su pared celular.
La morfología de los microorganismos puede ser observada a partir de preparados frescos o fijos y,
teñidos por algunos de los métodos de tinción conocidas; ya que, por su misma estructura son difíciles
de visualizar en su estado natural. Las tinciones microbiológicas y los procedimientos de tinción en
unión con la microscopía de luz son una herramienta básica importante en microbiología, permitiendo
estudiar las propiedades de los microorganismos y su división en grupos específicos para propósitos
diagnósticos (Martin, 2021).
La tinción de Gram es una técnica de coloración diferencial utilizada ampliamente en microbiología
para clasificar las bacterias en dos grandes grupos: Gram positivas (+) Gram negativas (-), según la
composición estructural de su pared celular. Fue desarrollada en 1884 por el científico danés Hans
Cristian Gram, y desde entonces ha sido fundamental para el diagnóstico clínico y la investigación
microbiológico (Ahmad et al., 2017)
Nombre común Picudo negro
Nombre científico Cosmopolites sordilus
Código Pg
Nombre común Mosca carroñera
Nombre científico Sarcophaga spp
Código Mc
Tabla 4
Tabla 5
Tinción de Gram
Aplicamos la tinción de Gram para la identificación y clasificación de bacterias aisladas de los
artrópodos recolectados en el cultivo de banano. Esta prueba nos permite diferenciarlas en dos grupos:
Gram positivas (+) y Gram negativas(-) , según la estructura de su pared celular.
La morfología de los microorganismos puede ser observada a partir de preparados frescos o fijos y,
teñidos por algunos de los métodos de tinción conocidas; ya que, por su misma estructura son difíciles
de visualizar en su estado natural. Las tinciones microbiológicas y los procedimientos de tinción en
unión con la microscopía de luz son una herramienta básica importante en microbiología, permitiendo
estudiar las propiedades de los microorganismos y su división en grupos específicos para propósitos
diagnósticos (Martin, 2021).
La tinción de Gram es una técnica de coloración diferencial utilizada ampliamente en microbiología
para clasificar las bacterias en dos grandes grupos: Gram positivas (+) Gram negativas (-), según la
composición estructural de su pared celular. Fue desarrollada en 1884 por el científico danés Hans
Cristian Gram, y desde entonces ha sido fundamental para el diagnóstico clínico y la investigación
microbiológico (Ahmad et al., 2017)
Nombre común Picudo negro
Nombre científico Cosmopolites sordilus
Código Pg
Nombre común Mosca carroñera
Nombre científico Sarcophaga spp
Código Mc
pág. 4661
La función principal de la tinción de Gram es identificar de manera rápida y preliminar el tipo de
bacteria presente en una muestra, facilitando la elección o tratamiento antimicrobiano adecuado y
permitiendo una orientación inicial del diagnóstico (Staley et al., 2019). Además, esta técnica es clave
en los estudios taxonómicos, ecológicos y de resistencia bacteriana.
Figura 4. Reactivos y materiales Figura 5 y 6. Proceso de preparación de muestras
Método de la cinta adhesiva
Este método se aplica en la agricultura principalmente para la identificación rápida y segura de hongos
fitopatógenos, los cuales son responsables de numerosas enfermedades que afectan los cultivos. El
método seguro y eficaz de contacto con cinta adhesiva consiste en utilizar un aplicador, alrededor del
cual se enrolla la cinta con el lado adhesivo expuesto, realizando un corte de aproximadamente 1,27 cm
desde el extremo libre. Posteriormente, la cinta se aplica suavemente sobre la colonia fúngica para
recoger estructuras como esporas o hifas, y luego se coloca, con el lado adhesivo hacia abajo, sobre una
gota de medio de montaje, comúnmente azul de lactofenol, en un cubreobjetos. Este procedimiento
permite obtener preparaciones de alta calidad para su observación microscópica, minimizando la
manipulación directa y reduciendo el riesgo de contaminación, siendo una técnica recomendada para la
identificación de hongos fitopatógenos en el ámbito agrícola (Harris, 2000).
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Géneros bacterianos aislados
En la muestra identificada con el código MR, se observa el crecimiento de Bacillus subtilis, una bacteria
Gram positiva (+), ampliamente reconocida por su capacidad de formar endosporas y su papel
beneficioso en ambientes agrícolas. En la imagen de la placa Petri se evidencian colonias blancas,
opacas y con bordes irregulares, características de esta especie.
La función principal de la tinción de Gram es identificar de manera rápida y preliminar el tipo de
bacteria presente en una muestra, facilitando la elección o tratamiento antimicrobiano adecuado y
permitiendo una orientación inicial del diagnóstico (Staley et al., 2019). Además, esta técnica es clave
en los estudios taxonómicos, ecológicos y de resistencia bacteriana.
Figura 4. Reactivos y materiales Figura 5 y 6. Proceso de preparación de muestras
Método de la cinta adhesiva
Este método se aplica en la agricultura principalmente para la identificación rápida y segura de hongos
fitopatógenos, los cuales son responsables de numerosas enfermedades que afectan los cultivos. El
método seguro y eficaz de contacto con cinta adhesiva consiste en utilizar un aplicador, alrededor del
cual se enrolla la cinta con el lado adhesivo expuesto, realizando un corte de aproximadamente 1,27 cm
desde el extremo libre. Posteriormente, la cinta se aplica suavemente sobre la colonia fúngica para
recoger estructuras como esporas o hifas, y luego se coloca, con el lado adhesivo hacia abajo, sobre una
gota de medio de montaje, comúnmente azul de lactofenol, en un cubreobjetos. Este procedimiento
permite obtener preparaciones de alta calidad para su observación microscópica, minimizando la
manipulación directa y reduciendo el riesgo de contaminación, siendo una técnica recomendada para la
identificación de hongos fitopatógenos en el ámbito agrícola (Harris, 2000).
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Géneros bacterianos aislados
En la muestra identificada con el código MR, se observa el crecimiento de Bacillus subtilis, una bacteria
Gram positiva (+), ampliamente reconocida por su capacidad de formar endosporas y su papel
beneficioso en ambientes agrícolas. En la imagen de la placa Petri se evidencian colonias blancas,
opacas y con bordes irregulares, características de esta especie.
pág. 4662
En la imagen del microscopio, se visualizan células bacilares organizadas en cadenas largas y teñidas
de color púrpura intenso, indicando la retención del cristal violeta en la tinción de Gram. Esta bacteria
fue aislada de artrópodos capturados en plantas de banano, lo que sugiere su posible papel como
microbio endógeno con funciones benéficas, como la promoción del crecimiento vegetal (PGPB) como
lo indica (Sun et al., 2021), producción de enzimas hidrolíticas y antagonismo frente a patógenos del
suelo. Según sus características morfológicas observadas es la bacteria Bacillus subtilis.
Tabla 6
Mil Pies Rayados Mr (Tabla 1)
Caja De Petri De Bacteria Mr
05/12/2024-12/12/2024
Bacteria En Microscopio
(Bacillus Subtilis)
Células Bacterianas Teñidas
De Color Púrpura Con
Morfología Bacilar Y
Agrupamientos Irregulares.
Se puede observar en la primera imagen, correspondiente a una caja de Petri, el crecimiento de colonias
bacterianas con morfología circular, bordes definidos y aspecto mucoso. Estas características son
consistentes con lo descrito para bacterias del género Klebsiella spp. En la segunda imagen, obtenida
mediante tinción de Gram, se visualizan bacilos cortos de color rosado, confirmando que se trata de
bacterias Gram negativas (-). Esta coloración responde a la composición de su pared celular,
caracterizada por una delgada capa de peptidoglicano y una membrana externa que impide la retención
del cristal violeta.
En la imagen del microscopio, se visualizan células bacilares organizadas en cadenas largas y teñidas
de color púrpura intenso, indicando la retención del cristal violeta en la tinción de Gram. Esta bacteria
fue aislada de artrópodos capturados en plantas de banano, lo que sugiere su posible papel como
microbio endógeno con funciones benéficas, como la promoción del crecimiento vegetal (PGPB) como
lo indica (Sun et al., 2021), producción de enzimas hidrolíticas y antagonismo frente a patógenos del
suelo. Según sus características morfológicas observadas es la bacteria Bacillus subtilis.
Tabla 6
Mil Pies Rayados Mr (Tabla 1)
Caja De Petri De Bacteria Mr
05/12/2024-12/12/2024
Bacteria En Microscopio
(Bacillus Subtilis)
Células Bacterianas Teñidas
De Color Púrpura Con
Morfología Bacilar Y
Agrupamientos Irregulares.
Se puede observar en la primera imagen, correspondiente a una caja de Petri, el crecimiento de colonias
bacterianas con morfología circular, bordes definidos y aspecto mucoso. Estas características son
consistentes con lo descrito para bacterias del género Klebsiella spp. En la segunda imagen, obtenida
mediante tinción de Gram, se visualizan bacilos cortos de color rosado, confirmando que se trata de
bacterias Gram negativas (-). Esta coloración responde a la composición de su pared celular,
caracterizada por una delgada capa de peptidoglicano y una membrana externa que impide la retención
del cristal violeta.
pág. 4663
Según las características morfológicas observadas, se infiere que corresponde a Klebsiella spp., lo cual
coincide con lo reportado por (Li et al., 2022), quienes aislaron cepas de Klebsiella con características
similares y funciones benéficas en la promoción del crecimiento vegetal, incluyendo resistencia al estrés
abiótico, producción de fitohormonas y solubilización de nutrientes.
Tabla 7
Araña Lobo AL (Tabla 2)
Caja de Petri de bacteria AL
Bacteria en microscopio
(Klebsiella spp)
Bacterias con forma de
bacilos cortos de coloración
rosada distribuidos de manera
dispersa.
Se puede observar en la caja de Petri de la muestra GR el crecimiento de colonias bacterianas pequeñas,
de forma circular, superficie convexa y bordes definidos, distribuidas de forma dispersa sobre el medio
de cultivo. Estas características corresponden al patrón típico de crecimiento de Enterobacter cloacae,
una bacteria del grupo de los enterobacterales. En la micrografía obtenida mediante tinción de Gram,
se visualizan numerosos bacilos teñidos de color rosado, lo cual indica que se trata de una bacteria Gram
Negativa (-). Esta coloración se debe a que la pared celular del microorganismo es delgada y no retiene
el cristal violeta tal y como lo comprobó (Macedo et al., 2019), permitiendo el paso del colorante de
contraste (safranina). Según sus características morfológicas observadas es la bacteria Enterobacter
cloaca.
Según las características morfológicas observadas, se infiere que corresponde a Klebsiella spp., lo cual
coincide con lo reportado por (Li et al., 2022), quienes aislaron cepas de Klebsiella con características
similares y funciones benéficas en la promoción del crecimiento vegetal, incluyendo resistencia al estrés
abiótico, producción de fitohormonas y solubilización de nutrientes.
Tabla 7
Araña Lobo AL (Tabla 2)
Caja de Petri de bacteria AL
Bacteria en microscopio
(Klebsiella spp)
Bacterias con forma de
bacilos cortos de coloración
rosada distribuidos de manera
dispersa.
Se puede observar en la caja de Petri de la muestra GR el crecimiento de colonias bacterianas pequeñas,
de forma circular, superficie convexa y bordes definidos, distribuidas de forma dispersa sobre el medio
de cultivo. Estas características corresponden al patrón típico de crecimiento de Enterobacter cloacae,
una bacteria del grupo de los enterobacterales. En la micrografía obtenida mediante tinción de Gram,
se visualizan numerosos bacilos teñidos de color rosado, lo cual indica que se trata de una bacteria Gram
Negativa (-). Esta coloración se debe a que la pared celular del microorganismo es delgada y no retiene
el cristal violeta tal y como lo comprobó (Macedo et al., 2019), permitiendo el paso del colorante de
contraste (safranina). Según sus características morfológicas observadas es la bacteria Enterobacter
cloaca.
pág. 4664
Tabla 8
Gusano Cola De Rata GR (tabla 3)
Caja de Petri de bacteria GR
Bacteria en microscopio
(Enterobacter cloaca)
Bacilos teñidos de color
rosado, cortos, en pequeños
grupos.
En la caja de Petri correspondiente al aislamiento PG se observa el crecimiento de colonias bacterianas
grandes, mucosas, de bordes lisos y superficie brillante y húmeda, características típicas de bacterias
del género Klebsiella spp. La distribución homogénea de las colonias sobre la superficie del medio
evidencia una alta capacidad de proliferación bajo condiciones de laboratorio favorables. Por otro lado,
en la imagen obtenida mediante tinción de Gram se visualizan bacilos cortos teñidos de color rosado,
dispuestos de manera dispersa en el campo, lo que confirma que se trata de bacterias Gram negativas.
Según las características morfológicas observadas, se infiere que corresponde a Klebsiella spp.
Cabe destacar que este género se caracteriza por la formación de colonias mucoides debido a la
presencia de una cápsula, su morfología de bacilos Gram negativos (-) no móviles y su amplia
distribución en ambientes como suelos, agua, plantas e incluso artrópodos , lo que concuerda con lo
reportado por (Dantur et al., 2018).
Tabla 8
Gusano Cola De Rata GR (tabla 3)
Caja de Petri de bacteria GR
Bacteria en microscopio
(Enterobacter cloaca)
Bacilos teñidos de color
rosado, cortos, en pequeños
grupos.
En la caja de Petri correspondiente al aislamiento PG se observa el crecimiento de colonias bacterianas
grandes, mucosas, de bordes lisos y superficie brillante y húmeda, características típicas de bacterias
del género Klebsiella spp. La distribución homogénea de las colonias sobre la superficie del medio
evidencia una alta capacidad de proliferación bajo condiciones de laboratorio favorables. Por otro lado,
en la imagen obtenida mediante tinción de Gram se visualizan bacilos cortos teñidos de color rosado,
dispuestos de manera dispersa en el campo, lo que confirma que se trata de bacterias Gram negativas.
Según las características morfológicas observadas, se infiere que corresponde a Klebsiella spp.
Cabe destacar que este género se caracteriza por la formación de colonias mucoides debido a la
presencia de una cápsula, su morfología de bacilos Gram negativos (-) no móviles y su amplia
distribución en ambientes como suelos, agua, plantas e incluso artrópodos , lo que concuerda con lo
reportado por (Dantur et al., 2018).
pág. 4665
Tabla 9
Picudo Negro PG (tabla 4)
Caja de Petri de bacteria PG
Bacteria en microscopio
(Klebsiella spp)
Bacilos cortos teñidos de
color rosado de manera
dispersa.
Tipo de Hongo Aislado
Durante el proceso de aislamiento y caracterización morfológica de hongos en medio de cultivo PDA
(Papa Dextrosa Agar), se observó una colonia fúngica con características distintivas que permitieron
avanzar en su identificación preliminar. En la caja Petri se aprecia una colonia de crecimiento circular,
con márgenes definidos y una textura superficial algodonosa. La colonia presenta un centro de color
verde oscuro, mientras que los bordes externos exhiben un micelio blanco, denso y lanoso, lo cual es
indicativo de un crecimiento activo del micelio hacia la periferia. La visión inferior de la colonia permite
observar una coloración homogénea en tonos oscuros y un patrón radial estrellado característico del
género Penicillium, que suele manifestarse cuando el micelio penetra en la profundidad del medio. A
nivel microscópico se observaron hifas septadas, conidióforos ramificados en forma de pincel y
conidios lisos en cadenas cortas, lo que coincide con hallazgos similares en estudios previos (Sawant et
al., 2023).
Tabla 9
Picudo Negro PG (tabla 4)
Caja de Petri de bacteria PG
Bacteria en microscopio
(Klebsiella spp)
Bacilos cortos teñidos de
color rosado de manera
dispersa.
Tipo de Hongo Aislado
Durante el proceso de aislamiento y caracterización morfológica de hongos en medio de cultivo PDA
(Papa Dextrosa Agar), se observó una colonia fúngica con características distintivas que permitieron
avanzar en su identificación preliminar. En la caja Petri se aprecia una colonia de crecimiento circular,
con márgenes definidos y una textura superficial algodonosa. La colonia presenta un centro de color
verde oscuro, mientras que los bordes externos exhiben un micelio blanco, denso y lanoso, lo cual es
indicativo de un crecimiento activo del micelio hacia la periferia. La visión inferior de la colonia permite
observar una coloración homogénea en tonos oscuros y un patrón radial estrellado característico del
género Penicillium, que suele manifestarse cuando el micelio penetra en la profundidad del medio. A
nivel microscópico se observaron hifas septadas, conidióforos ramificados en forma de pincel y
conidios lisos en cadenas cortas, lo que coincide con hallazgos similares en estudios previos (Sawant et
al., 2023).
pág. 4666
La presencia de este hongo en ambientes agrícolas con residuos orgánicos también ha sido reportada en
suelos contaminados y medios agrícolas, lo que sugiere su adaptación y posible rol en la degradación
de materia orgánica. Según sus características morfológicas observadas y más específicamente, del
género Penicillium y su especie Penicillium chrysogenum.
Tabla 10
Mosca Carroñera (Tabla 5)
Caja de Petri de hongo AT
Hongo en microscopio
(Penicillium chrysogenum)
Hifas septadas,
conidióforos ramificados,
fiálides alargadas y
conidios elípticos.
CONCLUSIÓN
El análisis microbiológico realizado en artrópodos capturados en la plantación de banano de la finca
Agrícola Jorge Xavier evidenció la presencia de una diversidad significativa de microorganismos con
potencial relevancia en el ecosistema agrícola. A través del aislamiento e identificación microbiológica,
se detectaron bacterias pertenecientes a los géneros Bacillus, Klebsiella y Enterobacter, así como
hongos del género Penicillium. Estos resultados confirman que los artrópodos actúan como vectores
microbianos, facilitando la diseminación de microorganismos que pueden tener efectos tanto
beneficiosos como perjudiciales sobre los cultivos.
La presencia de este hongo en ambientes agrícolas con residuos orgánicos también ha sido reportada en
suelos contaminados y medios agrícolas, lo que sugiere su adaptación y posible rol en la degradación
de materia orgánica. Según sus características morfológicas observadas y más específicamente, del
género Penicillium y su especie Penicillium chrysogenum.
Tabla 10
Mosca Carroñera (Tabla 5)
Caja de Petri de hongo AT
Hongo en microscopio
(Penicillium chrysogenum)
Hifas septadas,
conidióforos ramificados,
fiálides alargadas y
conidios elípticos.
CONCLUSIÓN
El análisis microbiológico realizado en artrópodos capturados en la plantación de banano de la finca
Agrícola Jorge Xavier evidenció la presencia de una diversidad significativa de microorganismos con
potencial relevancia en el ecosistema agrícola. A través del aislamiento e identificación microbiológica,
se detectaron bacterias pertenecientes a los géneros Bacillus, Klebsiella y Enterobacter, así como
hongos del género Penicillium. Estos resultados confirman que los artrópodos actúan como vectores
microbianos, facilitando la diseminación de microorganismos que pueden tener efectos tanto
beneficiosos como perjudiciales sobre los cultivos.
pág. 4667
La presencia de bacterias del género Bacillus, ampliamente conocido por su actividad antagonista contra
fitopatógenos, sugiere un posible rol en el control biológico. Sin embargo, la identificación de géneros
como Klebsiella y Enterobacter, asociados a procesos de descomposición o enfermedades, plantea la
necesidad de un monitoreo más exhaustivo. En cuanto al hongo Penicillium, su capacidad para producir
metabolitos secundarios también puede influir en la dinámica microbiana del agroecosistema.
Estos hallazgos subrayan la importancia de incluir el monitoreo microbiano de artrópodos dentro de las
estrategias de manejo integrado del cultivo. Comprender la diversidad, abundancia y función ecológica
de los microorganismos asociados permitirá desarrollar medidas sostenibles para mitigar enfermedades,
mejorar la salud del suelo y garantizar una producción bananera más resiliente y eficiente.
AGRADECIMIENTO
Expresamos nuestro agradecimiento a la empresa de Agrisum por brindarnos la oportunidad y
permitirnos realizar nuestra investigación en su laboratorio. Su colaboración fue fundamental para el
desarrollo de nuestra investigación.
REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS
Acaro , B. P., y Cevallos, S. (2025). Hongos asociados al cultivo de banano (Musa spp.) con potencial
biotecnológico para el desarrollo de inoculantes. Revista de Ciencias de la Vida, 12(1).
https://doi.org/https://doi.org/10.29166/siembra.v12i1.7053
Ahmad, N., Alspaugh, A., Drew, L., Lagunoff, M., Pottinger, P., Reller, B., . . . Weissman, S. (2017).
Sherris Medical Microbiology. McGraw-Hill Education.
Atlas, R. M. (2010). Handbook of Microbiological Media. CRC Press, 4(13).
https://doi.org/https://doi.org/10.1201/EBK1439804063
Berg, G., Eberl, L., y Hartmann, A. (2005). The rhizosphere as a reservoir for opportunistic
humanpathogenic bacteria. Environmental Microbiology, 7(11).
https://doi.org/https://doi.org/10.1111/j.1462-2920.2005.00891.x
Buckley, D., Stahl, D., Bender, K., Madigan, M., y Sattley, M. (2021). BROCK. BIOLOGY OF
MICROORGANISMS. Pearson Global Editions, 16.
https://api.pageplace.de/preview/DT0400.9781292405063_A42098415/preview-
9781292405063_A42098415.pdf
La presencia de bacterias del género Bacillus, ampliamente conocido por su actividad antagonista contra
fitopatógenos, sugiere un posible rol en el control biológico. Sin embargo, la identificación de géneros
como Klebsiella y Enterobacter, asociados a procesos de descomposición o enfermedades, plantea la
necesidad de un monitoreo más exhaustivo. En cuanto al hongo Penicillium, su capacidad para producir
metabolitos secundarios también puede influir en la dinámica microbiana del agroecosistema.
Estos hallazgos subrayan la importancia de incluir el monitoreo microbiano de artrópodos dentro de las
estrategias de manejo integrado del cultivo. Comprender la diversidad, abundancia y función ecológica
de los microorganismos asociados permitirá desarrollar medidas sostenibles para mitigar enfermedades,
mejorar la salud del suelo y garantizar una producción bananera más resiliente y eficiente.
AGRADECIMIENTO
Expresamos nuestro agradecimiento a la empresa de Agrisum por brindarnos la oportunidad y
permitirnos realizar nuestra investigación en su laboratorio. Su colaboración fue fundamental para el
desarrollo de nuestra investigación.
REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS
Acaro , B. P., y Cevallos, S. (2025). Hongos asociados al cultivo de banano (Musa spp.) con potencial
biotecnológico para el desarrollo de inoculantes. Revista de Ciencias de la Vida, 12(1).
https://doi.org/https://doi.org/10.29166/siembra.v12i1.7053
Ahmad, N., Alspaugh, A., Drew, L., Lagunoff, M., Pottinger, P., Reller, B., . . . Weissman, S. (2017).
Sherris Medical Microbiology. McGraw-Hill Education.
Atlas, R. M. (2010). Handbook of Microbiological Media. CRC Press, 4(13).
https://doi.org/https://doi.org/10.1201/EBK1439804063
Berg, G., Eberl, L., y Hartmann, A. (2005). The rhizosphere as a reservoir for opportunistic
humanpathogenic bacteria. Environmental Microbiology, 7(11).
https://doi.org/https://doi.org/10.1111/j.1462-2920.2005.00891.x
Buckley, D., Stahl, D., Bender, K., Madigan, M., y Sattley, M. (2021). BROCK. BIOLOGY OF
MICROORGANISMS. Pearson Global Editions, 16.
https://api.pageplace.de/preview/DT0400.9781292405063_A42098415/preview-
9781292405063_A42098415.pdf
pág. 4668
Cappuccino, J., y Welsh, C. (2008). Microbiology a laboratory manual. Pearson Education Limited,
11(569). https://archive.org/details/microbiologylabo0000capp_v2t7
Chakraborty, A. (2022). ShortNotes on Bionomics and Taxonomy of Sarcophaga (Parasarcophaga)
albiceps(Meigen,1826), a Fly of Veterinary Importance. ACTA SCIENTIFIC VETERINARY
SCIENCES. https://doi.org/https://www.researchgate.net/publication/372940007
Dantur, K., Chalfoun, N., Claps, M., Tórtora, M., Silva, C., Jure, Á., . . . Welin, B. (2018). The
Endophytic Strain Klebsiella michiganensis Kd70 Lacks Pathogenic Island-Like Regions in Its
Genome and Is Incapable of Infecting the Urinary Tract in Mice. Frontiers in Microbiology, 9.
https://doi.org/https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.01548
Enoh, A. C., Akoachere, J. F., Fossi, T. B., Membang, G., Ngatat, S., Kuate, A. F., . . . Fiaboe, K. M.
(2024). Potential of Cameroonian isolates of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae
for the biocontrol of the banana aphid, Pentalonia nigronervosa, vector of banana bunchy top
virus. PLOS ONE, 19(11). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0310746
Eyiuche, J., Šustr, V., Brune, A., y Angel, R. (2024). Functional similarity, despite taxonomical
divergence in the millipede gut microbiota, points to a common trophic strategy. ISME
Communications. https://doi.org/https://doi.org/10.1186/s40168-023-01731-7
Fernández, R., Edgecombe, G., y Giribet, G. (2016). Exploring Phylogenetic Relationships within
Myriapoda and the Effects of Matrix Composition and Occupancy on Phylogenomic
Reconstructio. Systematic Biology. https://doi.org/ https://doi.org/10.1093/sysbio/syw041
Gerda, F., Steenkamp, E., Ploetz, R., Gordon, T., y Viljoen, A. (2011). Current status of the taxonomic
position of Fusarium oxysporum formae specialis cubense within the Fusarium oxysporum
complex. Infection, Genetics and Evolution, 11(3).
https://doi.org/10.1016/j.meegid.2011.01.012
Harris, J. (2000). Safe, Low-Distortion Tape Touch Method for Fungal Slide Mounts. American Society
For Microbiology, 38(12). https://doi.org/https://doi.org/10.1128/jcm.38.12.4683-4684.2000
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albiceps(Meigen,1826), a Fly of Veterinary Importance. ACTA SCIENTIFIC VETERINARY
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Dantur, K., Chalfoun, N., Claps, M., Tórtora, M., Silva, C., Jure, Á., . . . Welin, B. (2018). The
Endophytic Strain Klebsiella michiganensis Kd70 Lacks Pathogenic Island-Like Regions in Its
Genome and Is Incapable of Infecting the Urinary Tract in Mice. Frontiers in Microbiology, 9.
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Enoh, A. C., Akoachere, J. F., Fossi, T. B., Membang, G., Ngatat, S., Kuate, A. F., . . . Fiaboe, K. M.
(2024). Potential of Cameroonian isolates of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae
for the biocontrol of the banana aphid, Pentalonia nigronervosa, vector of banana bunchy top
virus. PLOS ONE, 19(11). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0310746
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Myriapoda and the Effects of Matrix Composition and Occupancy on Phylogenomic
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Gerda, F., Steenkamp, E., Ploetz, R., Gordon, T., y Viljoen, A. (2011). Current status of the taxonomic
position of Fusarium oxysporum formae specialis cubense within the Fusarium oxysporum
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pág. 4669
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Evaluation of the Entomopathogenic Potential of Beauveria bassiana, Metarhizium anisopliae
and Isaria fumosorosea for Management of Cosmopolites sordidus Germar (Coleoptera:
Curculionidae). MDPI Open Access Journals, 11(1290).
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Banana Plants and Protects Against the Black Sigatoka Pathogen. Frontiers in Microbiology,
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