EVALUACIÓN NÉMATICIDA DE DOS
ESPECIES DE TRICHODERMA SPP. EN
EL CULTIVO DE BANANO EN ECUADOR
NEMATICIDAL EVALUATION OF TWO TRICHODERMA
SPP. SPECIES IN BANANA CULTIVATION IN ECUADOR
Nataly Estefanía Nagua Nagua
Universidad Técnica de Machala, Ecuador
Cesar David Guanoluiza Maxi
Universidad Técnica de Machala, Ecuador
José Nicasio Quevedo Guerrero
Universidad Técnica de Machala, Ecuador
pág. 7618
DOI: https://doi.org/10.37811/cl_rcm.v9i6.21909
Evaluación Nématicida de dos Especies de Trichoderma SPP. en el Cultivo
de Banano en Ecuador
Nataly Estefanía Nagua Nagua1
nnagua@utmachala.edu.ec
https://orcid.org/0009-0003-6541-1396
Universidad Técnica de Machala
Ecuador
Cesar David Guanoluiza Maxi
Cguanolui1@utmachala.edu.ec
https://orcid.org/0009-0002-9731-7452
Universidad Técnica de Machala
Ecuador
José Nicasio Quevedo Guerrero
jnquevedo@utmachala.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-8974-5628
Universidad Técnica de Machala
Ecuador
RESUMEN
El presente estudio tuvo como objetivo evaluar el efecto nematicida de Trichoderma asperellum y
Trichoderma piluliferum sobre las poblaciones de Radopholus spp. y Meloidogyne spp. en el cultivo de
banano, bajo condiciones de vivero y laboratorio en la provincia de El Oro, Ecuador. La investigación
se desarrolló mediante un diseño completamente al azar, considerando tres tratamientos: dos con
especies de Trichoderma y un tratamiento control. Las cepas fueron multiplicadas y aplicadas a las
unidades experimentales, realizándose evaluaciones periódicas cada 30 días. La extracción e
identificación de los nematodos se efectuó utilizando el método de embudo de Baermann y observación
microscópica hasta nivel de género. Los resultados mostraron que ambos tratamientos biológicos
redujeron significativamente las poblaciones de nematodos en comparación con el control,
evidenciando un efecto progresivo a lo largo del tiempo. Trichoderma asperellum presentó una mayor
eficiencia en la supresión poblacional, especialmente en las evaluaciones finales. Estos resultados
confirman el potencial de Trichoderma spp. como una alternativa viable y sostenible para el manejo
biológico de nematodos fitoparásitos en el cultivo de banano.
Palabras clave: trichoderma spp, control biológico, nematodos fitoparásito, manejo sostenible
1 Autor principal
Correspondencia: nnagua3@utmachala.edu.ec
DOI: https://doi.org/10.37811/cl_rcm.v9i6.21909
Evaluación Nématicida de dos Especies de Trichoderma SPP. en el Cultivo
de Banano en Ecuador
Nataly Estefanía Nagua Nagua1
nnagua@utmachala.edu.ec
https://orcid.org/0009-0003-6541-1396
Universidad Técnica de Machala
Ecuador
Cesar David Guanoluiza Maxi
Cguanolui1@utmachala.edu.ec
https://orcid.org/0009-0002-9731-7452
Universidad Técnica de Machala
Ecuador
José Nicasio Quevedo Guerrero
jnquevedo@utmachala.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-8974-5628
Universidad Técnica de Machala
Ecuador
RESUMEN
El presente estudio tuvo como objetivo evaluar el efecto nematicida de Trichoderma asperellum y
Trichoderma piluliferum sobre las poblaciones de Radopholus spp. y Meloidogyne spp. en el cultivo de
banano, bajo condiciones de vivero y laboratorio en la provincia de El Oro, Ecuador. La investigación
se desarrolló mediante un diseño completamente al azar, considerando tres tratamientos: dos con
especies de Trichoderma y un tratamiento control. Las cepas fueron multiplicadas y aplicadas a las
unidades experimentales, realizándose evaluaciones periódicas cada 30 días. La extracción e
identificación de los nematodos se efectuó utilizando el método de embudo de Baermann y observación
microscópica hasta nivel de género. Los resultados mostraron que ambos tratamientos biológicos
redujeron significativamente las poblaciones de nematodos en comparación con el control,
evidenciando un efecto progresivo a lo largo del tiempo. Trichoderma asperellum presentó una mayor
eficiencia en la supresión poblacional, especialmente en las evaluaciones finales. Estos resultados
confirman el potencial de Trichoderma spp. como una alternativa viable y sostenible para el manejo
biológico de nematodos fitoparásitos en el cultivo de banano.
Palabras clave: trichoderma spp, control biológico, nematodos fitoparásito, manejo sostenible
1 Autor principal
Correspondencia: nnagua3@utmachala.edu.ec
pág. 7619
Nematicidal Evaluation of Two Trichoderma Spp. Species in Banana
Cultivation in Ecuador
ABSTRACT
The present study aimed to evaluate the nematicidal effect of Trichoderma asperellum and Trichoderma
piluliferum on populations of Radopholus spp. and Meloidogyne spp. in banana cultivation under
nursery and laboratory conditions in El Oro Province, Ecuador. The research was conducted using a
completely randomized design, including three treatments: two with Trichoderma species and a control
treatment. The strains were multiplied and applied to the experimental units, with periodic evaluations
conducted every 30 days. Nematode extraction and identification were performed using the Baermann
funnel method and microscopic observation to the genus level. The results showed that both biological
treatments significantly reduced nematode populations compared to the control, exhibiting a
progressive effect over time. Trichoderma asperellum showed greater efficiency in population
suppression, particularly in the final evaluations. These findings confirm the potential of Trichoderma
spp. as a viable and sustainable alternative for the biological management of phytoparasitic nematodes
in banana cultivation.
Keywords: trichoderma spp, biological control, phytoparasitic nematodes, sustainable management
Artículo recibido 10 noviembre 2025
Aceptado para publicación: 10 diciembre 2026
Nematicidal Evaluation of Two Trichoderma Spp. Species in Banana
Cultivation in Ecuador
ABSTRACT
The present study aimed to evaluate the nematicidal effect of Trichoderma asperellum and Trichoderma
piluliferum on populations of Radopholus spp. and Meloidogyne spp. in banana cultivation under
nursery and laboratory conditions in El Oro Province, Ecuador. The research was conducted using a
completely randomized design, including three treatments: two with Trichoderma species and a control
treatment. The strains were multiplied and applied to the experimental units, with periodic evaluations
conducted every 30 days. Nematode extraction and identification were performed using the Baermann
funnel method and microscopic observation to the genus level. The results showed that both biological
treatments significantly reduced nematode populations compared to the control, exhibiting a
progressive effect over time. Trichoderma asperellum showed greater efficiency in population
suppression, particularly in the final evaluations. These findings confirm the potential of Trichoderma
spp. as a viable and sustainable alternative for the biological management of phytoparasitic nematodes
in banana cultivation.
Keywords: trichoderma spp, biological control, phytoparasitic nematodes, sustainable management
Artículo recibido 10 noviembre 2025
Aceptado para publicación: 10 diciembre 2026
pág. 7620
INTRODUCCIÓN
El banano se destaca como una de las frutas tropicales más consumidas a nivel mundial, principalmente
por su alto valor energético. Más del 80 % de las exportaciones globales provienen de solo diez países,
la mayoría ubicados en América Latina y el Caribe, regiones que reúnen condiciones óptimas para su
cultivo Ecuador lidera la producción y exportación mundial de este fruto, con un promedio anual
cercano a seis millones de toneladas métricas destinadas a diversos mercados internacionales,
constituyéndose en el segundo rubro más importante de ingreso económico después del petróleo. En la
actualidad, el banano ocupa el primer lugar entre los productos agrícolas de mayor aporte a la economía
nacional, seguido del café y el cacao. Según registros del MAGAP, existen 162 039 hectáreas cultivadas,
de las cuales el 12 % corresponde a producción orgánica y el resto a producción convencional (Mata
et al., 2021).
Los nematodos fitoparásitos se consideran verdaderos enemigos silenciosos del agricultor, ya que, al
ser organismos microscópicos, actúan de manera oculta atacando principalmente las raíces. Sus efectos
suelen pasar desapercibidos o confundirse con deficiencias nutricionales o estrés ambiental, lo que
retrasa su diagnóstico y control. Estos parásitos deterioran el sistema radicular y los cormos, reduciendo
el crecimiento vegetal, el número de hojas y el tamaño de los racimos. Además, su acción favorece la
pudrición de raíces y el volcamiento de plantas, ocasionando pérdidas significativas. Los daños pueden
ser directos, por la destrucción celular, o indirectos, al facilitar la entrada de hongos y bacterias
patógenas (Guevara et al., 2024).
Ante tal problemática el uso de especies del género Trichoderma spp. se ha vuelto una de las opciones
biológicas más importantes, ya que han demostrado ser muy efectivas en el control de patógenos que
viven en el suelo, entre ellos los nematodos que dañan las raíces. Distintas especies de este hongo
destacan por su versatilidad y por actuar como verdaderos aliados naturales: frenan el desarrollo de los
nematodos produciendo compuestos bioactivos, proteínas con efecto nematicida y compitiendo
directamente con ellos en la rizósfera, donde logran establecerse y limitar su proliferación (Contreras
et al., 2025).
INTRODUCCIÓN
El banano se destaca como una de las frutas tropicales más consumidas a nivel mundial, principalmente
por su alto valor energético. Más del 80 % de las exportaciones globales provienen de solo diez países,
la mayoría ubicados en América Latina y el Caribe, regiones que reúnen condiciones óptimas para su
cultivo Ecuador lidera la producción y exportación mundial de este fruto, con un promedio anual
cercano a seis millones de toneladas métricas destinadas a diversos mercados internacionales,
constituyéndose en el segundo rubro más importante de ingreso económico después del petróleo. En la
actualidad, el banano ocupa el primer lugar entre los productos agrícolas de mayor aporte a la economía
nacional, seguido del café y el cacao. Según registros del MAGAP, existen 162 039 hectáreas cultivadas,
de las cuales el 12 % corresponde a producción orgánica y el resto a producción convencional (Mata
et al., 2021).
Los nematodos fitoparásitos se consideran verdaderos enemigos silenciosos del agricultor, ya que, al
ser organismos microscópicos, actúan de manera oculta atacando principalmente las raíces. Sus efectos
suelen pasar desapercibidos o confundirse con deficiencias nutricionales o estrés ambiental, lo que
retrasa su diagnóstico y control. Estos parásitos deterioran el sistema radicular y los cormos, reduciendo
el crecimiento vegetal, el número de hojas y el tamaño de los racimos. Además, su acción favorece la
pudrición de raíces y el volcamiento de plantas, ocasionando pérdidas significativas. Los daños pueden
ser directos, por la destrucción celular, o indirectos, al facilitar la entrada de hongos y bacterias
patógenas (Guevara et al., 2024).
Ante tal problemática el uso de especies del género Trichoderma spp. se ha vuelto una de las opciones
biológicas más importantes, ya que han demostrado ser muy efectivas en el control de patógenos que
viven en el suelo, entre ellos los nematodos que dañan las raíces. Distintas especies de este hongo
destacan por su versatilidad y por actuar como verdaderos aliados naturales: frenan el desarrollo de los
nematodos produciendo compuestos bioactivos, proteínas con efecto nematicida y compitiendo
directamente con ellos en la rizósfera, donde logran establecerse y limitar su proliferación (Contreras
et al., 2025).
pág. 7621
Este estudio tuvo como objetivo evaluar la acción nematicida de dos especies de Trichoderma spp.en
plantas de banano bajo condiciones de vivero y laboratorio para validar su eficacia como herramienta
d control biológico.
METODOLOGÍA
Ubicación del ensayo
La investigación se realizó en el laboratorio de sanidad vegetal de la Facultad de Ciencias
Agropecuarias, Ubicada en el km 5.5. vía Machala-Pasaje, la cual pertenece a la parroquia El Cambio,
Cantón Machala Provincia de El Oro, ubicado a 5msnm con una latitud de 3°15’ 4.03” S y una longitud
de 79°49’1.07” O.
Recolección de muestras
Se identificaron plantas en campo con características como amarillamiento, volcadas, escaso número
de hojas, carente de raíces y estás necróticas, luego se procedió a tomar muestras de suelo cerca de
madre e hijo aproximadamente a 30cm de profundidad, se recogió raíces sanas y enfermas en fundas
previamente etiquetadas, esto fue realizado con selección al azar de 15 plantas.(Vargas et al., 2011).
Procesamiento de muestras en laboratorio
El estudio de la población de nematodos fitoparásitos se inició con la fase de muestreo de raíces del
cultivo de banano, la cual es crucial para su detección. Siguiendo los protocolos de extracción de (Araya,
2002) y (Coyne et al., 2007) se procesaron las raíces mediante lavado y clasificación en dos grupos:
funcionales, no funcionales. Tras pesar cada grupo, se homogeneizó una muestra de 100 g con trozos
de 1 cm, la cual se licuó con 200 ml de agua en dos intervalos de velocidad de 30 segundos. La
suspensión se filtró a través de tamices, finalmente, tras el lavado correspondiente, se recuperó el
sedimento retenido en el tamiz de 0.45ml y se aforó en un vaso de precipitación hasta un volumen final
de 200 ml(González et al., 2021).
Método extracción de nematodos
Se utilizó el método de embudo de Baermann como la aplicó Tintori et al. (2022), el cual funciona
gracias a la acción de gravedad. Al colocar la muestra en contacto con agua destilada, los nematodos
debido a su propia densidad desplazan hacia abajo, atraviesan los poros del papel filtro y finalmente se
concentran en la parte inferior de la manguera acoplada al embudo.
Este estudio tuvo como objetivo evaluar la acción nematicida de dos especies de Trichoderma spp.en
plantas de banano bajo condiciones de vivero y laboratorio para validar su eficacia como herramienta
d control biológico.
METODOLOGÍA
Ubicación del ensayo
La investigación se realizó en el laboratorio de sanidad vegetal de la Facultad de Ciencias
Agropecuarias, Ubicada en el km 5.5. vía Machala-Pasaje, la cual pertenece a la parroquia El Cambio,
Cantón Machala Provincia de El Oro, ubicado a 5msnm con una latitud de 3°15’ 4.03” S y una longitud
de 79°49’1.07” O.
Recolección de muestras
Se identificaron plantas en campo con características como amarillamiento, volcadas, escaso número
de hojas, carente de raíces y estás necróticas, luego se procedió a tomar muestras de suelo cerca de
madre e hijo aproximadamente a 30cm de profundidad, se recogió raíces sanas y enfermas en fundas
previamente etiquetadas, esto fue realizado con selección al azar de 15 plantas.(Vargas et al., 2011).
Procesamiento de muestras en laboratorio
El estudio de la población de nematodos fitoparásitos se inició con la fase de muestreo de raíces del
cultivo de banano, la cual es crucial para su detección. Siguiendo los protocolos de extracción de (Araya,
2002) y (Coyne et al., 2007) se procesaron las raíces mediante lavado y clasificación en dos grupos:
funcionales, no funcionales. Tras pesar cada grupo, se homogeneizó una muestra de 100 g con trozos
de 1 cm, la cual se licuó con 200 ml de agua en dos intervalos de velocidad de 30 segundos. La
suspensión se filtró a través de tamices, finalmente, tras el lavado correspondiente, se recuperó el
sedimento retenido en el tamiz de 0.45ml y se aforó en un vaso de precipitación hasta un volumen final
de 200 ml(González et al., 2021).
Método extracción de nematodos
Se utilizó el método de embudo de Baermann como la aplicó Tintori et al. (2022), el cual funciona
gracias a la acción de gravedad. Al colocar la muestra en contacto con agua destilada, los nematodos
debido a su propia densidad desplazan hacia abajo, atraviesan los poros del papel filtro y finalmente se
concentran en la parte inferior de la manguera acoplada al embudo.
pág. 7622
Para el análisis, de una muestra inicial de 100 g de raíces con infección, se tomaron 20 g y se adicionaron
200 ml de agua para facilitar la extracción El medio liquido recolectado es el que se va a observar con
el microscopio para la identificación de nematodos (Lopez et al., 2022).
Identificación y conteo de población de nematodos
Por su tamaño microscópico por lo general se los trabaja en un medio líquido. Es decir, “pescarlos”
individualmente. Para observarlos, conviene extraerlos de la suspensión, colocarlos sobre un porta-
objetos y usar luz transmitida desde la base de una lupa binocular. La identificación y cuantificación de
las poblaciones de nematodos se realizó con un microscopio óptico a 40×. Se determinó hasta el nivel
de género mediante claves taxonómicas. En cada muestra se tomaron 5 ml de la suspensión y se contó
el número de individuos de cada género(Saharan et al., 2023)
Figura 1. Procesos de conteo de nematodos y observación.
A)Muestras de raices funcionales y no funcionales.
B) Se tomaron 20g de raices.
C) Visualización en estereoscopio.
D) Observación en microscopio de nematado
E) Observación con ayuda de imagen focus
A B
D E
C
Para el análisis, de una muestra inicial de 100 g de raíces con infección, se tomaron 20 g y se adicionaron
200 ml de agua para facilitar la extracción El medio liquido recolectado es el que se va a observar con
el microscopio para la identificación de nematodos (Lopez et al., 2022).
Identificación y conteo de población de nematodos
Por su tamaño microscópico por lo general se los trabaja en un medio líquido. Es decir, “pescarlos”
individualmente. Para observarlos, conviene extraerlos de la suspensión, colocarlos sobre un porta-
objetos y usar luz transmitida desde la base de una lupa binocular. La identificación y cuantificación de
las poblaciones de nematodos se realizó con un microscopio óptico a 40×. Se determinó hasta el nivel
de género mediante claves taxonómicas. En cada muestra se tomaron 5 ml de la suspensión y se contó
el número de individuos de cada género(Saharan et al., 2023)
Figura 1. Procesos de conteo de nematodos y observación.
A)Muestras de raices funcionales y no funcionales.
B) Se tomaron 20g de raices.
C) Visualización en estereoscopio.
D) Observación en microscopio de nematado
E) Observación con ayuda de imagen focus
A B
D E
C
pág. 7623
Multiplicación de Trichoderma spp.
Figura 2. Registro de multiplicación de Trichoderma spp. en sustrato de arroz.
A) Trichoderma asperellum.
B) Trichoderma piluliferum.
C) Inoculación de cepas al sustrato.
D) Colonización completa en sustrato.
El proceso se inicia con el acondicionamiento del sustrato de arroz, el cual es lavado, hidratado y
dosificado en bolsas de polipropileno. La etapa crucial es la esterilización del medio, realizada en
autoclave a 121 °C y 15 psi, para garantizar un ambiente libre de microorganismos contaminantes. Una
vez que el sustrato alcanza la temperatura ambiente, se procede a la inoculación aséptica dentro de una
campana de flujo laminar, utilizando los discos de micelio y esporas de las cepas puras de Trichoderma
spp. Posteriormente, las bolsas son incubadas en un rango de 25° a 30°C durante 8 a 15 días, con
agitación diaria para promover la colonización homogénea. El indicador de esporulación masiva es la
pigmentación verde intensa del sustrato. Finalmente, el producto se somete a un secado controlado y se
almacena en refrigeración para maximizar la viabilidad de los conidios a utilizar contra los nemátodos
en banano(Ugalde et al., 2024)
Preparación de inoculo Trichoderma spp.
Se empleó la cepa Trichoderma asperellum y Trichoderma piluliferum. Previo a colocar las dos
respectivas dosis de Trichoderma spp. se realizó un protocolo adaptado descrito por Troya y Vaca
(2014) para conteo de esporas para determinar la concentración de unidades formadoras de colonias
(UFC) en la dosis de inoculación.
A B C D
Multiplicación de Trichoderma spp.
Figura 2. Registro de multiplicación de Trichoderma spp. en sustrato de arroz.
A) Trichoderma asperellum.
B) Trichoderma piluliferum.
C) Inoculación de cepas al sustrato.
D) Colonización completa en sustrato.
El proceso se inicia con el acondicionamiento del sustrato de arroz, el cual es lavado, hidratado y
dosificado en bolsas de polipropileno. La etapa crucial es la esterilización del medio, realizada en
autoclave a 121 °C y 15 psi, para garantizar un ambiente libre de microorganismos contaminantes. Una
vez que el sustrato alcanza la temperatura ambiente, se procede a la inoculación aséptica dentro de una
campana de flujo laminar, utilizando los discos de micelio y esporas de las cepas puras de Trichoderma
spp. Posteriormente, las bolsas son incubadas en un rango de 25° a 30°C durante 8 a 15 días, con
agitación diaria para promover la colonización homogénea. El indicador de esporulación masiva es la
pigmentación verde intensa del sustrato. Finalmente, el producto se somete a un secado controlado y se
almacena en refrigeración para maximizar la viabilidad de los conidios a utilizar contra los nemátodos
en banano(Ugalde et al., 2024)
Preparación de inoculo Trichoderma spp.
Se empleó la cepa Trichoderma asperellum y Trichoderma piluliferum. Previo a colocar las dos
respectivas dosis de Trichoderma spp. se realizó un protocolo adaptado descrito por Troya y Vaca
(2014) para conteo de esporas para determinar la concentración de unidades formadoras de colonias
(UFC) en la dosis de inoculación.
A B C D
pág. 7624
Se realizóó la disolución seriada con el fin de disminuir la concentración de esporas, luego se tomó una
muestra de la última dilución (5 x 105) y se colocó en la cámara Neubauer. Finalmente, bajo el
microscopio se contaron las esporas, teniendo en cuenta las que se encuentran dentro del cuadrante y
excluyendo las que se encuentran en el borde inferior y derecho, considerando también que las 3 líneas
que delimitan el cuadro, las esporas que toquen la segunda línea no fueron contables. Para obtener la
concentración se calculó mediante la siguiente formula de acuerdo con el protocolo para reproducir
cepas.
𝐂 = (Esporas contadas en los 2 campos)
Superficie recontada 𝑚𝑚2 × profundidad mm × dilución
Donde:
Superficie recontada mm2: Es el total del área en que se realizó el conteo de las esporas.
Profundidad de cámara: La cámara del microscopio estándar viene fabricada con una profundidad de
0,1 mm.
Factor de dilución: corresponde a la dilución de la suspensión a partir de la cual se tomó la muestra
para el conteo. La dilución inicial fue 1:10, y cada dilución sucesiva se realizó de manera seriada,
incrementando el factor de dilución en un orden de magnitud (10¹, 10², 10³, etc.), según el número de
diluciones efectuadas.
Figura 3. Proceso de inoculación de Trichoderma spp. en unidades experimentales.
A) Peso de sustrato.
B) Disolución seriada para obtener esporas separadas entre sí.
C) Conteo de esporas en cámara Neubauer tratamiento.
D) Inoculación de hongo a unidades experimentales
A B DC
Se realizóó la disolución seriada con el fin de disminuir la concentración de esporas, luego se tomó una
muestra de la última dilución (5 x 105) y se colocó en la cámara Neubauer. Finalmente, bajo el
microscopio se contaron las esporas, teniendo en cuenta las que se encuentran dentro del cuadrante y
excluyendo las que se encuentran en el borde inferior y derecho, considerando también que las 3 líneas
que delimitan el cuadro, las esporas que toquen la segunda línea no fueron contables. Para obtener la
concentración se calculó mediante la siguiente formula de acuerdo con el protocolo para reproducir
cepas.
𝐂 = (Esporas contadas en los 2 campos)
Superficie recontada 𝑚𝑚2 × profundidad mm × dilución
Donde:
Superficie recontada mm2: Es el total del área en que se realizó el conteo de las esporas.
Profundidad de cámara: La cámara del microscopio estándar viene fabricada con una profundidad de
0,1 mm.
Factor de dilución: corresponde a la dilución de la suspensión a partir de la cual se tomó la muestra
para el conteo. La dilución inicial fue 1:10, y cada dilución sucesiva se realizó de manera seriada,
incrementando el factor de dilución en un orden de magnitud (10¹, 10², 10³, etc.), según el número de
diluciones efectuadas.
Figura 3. Proceso de inoculación de Trichoderma spp. en unidades experimentales.
A) Peso de sustrato.
B) Disolución seriada para obtener esporas separadas entre sí.
C) Conteo de esporas en cámara Neubauer tratamiento.
D) Inoculación de hongo a unidades experimentales
A B DC
pág. 7625
Diseño experimental
El experimento se desarrolló bajo un diseño completamente al azar (DCA) para evaluar la eficiencia de
dos cepas de Trichoderma spp., como agente de control biológico frente a nematodos en plantas de
banano. Para esto se utilizaron 9 plantas de banano cada una de ellas colocadas en rizotrones el cual
consta de un vidrio transparente que nos permitirá ir observando el efecto de los respectivos tratamientos
(Vallejo et al., 2025).
Los tratamientos consistieron en la aplicación de la misma cantidad de hongo, mismas dosis de (5 x105)
ufc/ml a excepto del tratamiento T3 que corresponde a un testigo al cual no se le aplicó ningún producto
que actúe como controlador de la población de nematodos. Se hicieron 3 inoculaciones cada 30 días
donde para la verificación del estado de nematodos se tomaron raíces luego de cada aplicación.
Esta frecuencia permite un monitoreo efectivo de la evolución del control de nematodos y recuperación
de sistema radicular.
La variable evaluada fue: la población de nematodos con la identificación de sus géneros como
Radopholus spp. y Meloydogine. Para su extracción se usó el método de embudo de Baermann (Lopez-
Nicora et al., 2022).
Tabla 1. Tratamientos aplicados a las unidades experimentales.
Número Tratamiento Dosis
T1 Se aplicó Trichoderma asperellum. 40 ml de inóculo con (5 x105) ufc/ml.
T2 Se aplicó Trichoderma Pilulliferum 40 ml de inóculo con (5 x105) ufc/ml
T3 Tratamiento Control 40 ml de inóculo con (5 x105) ufc/ml
Análisis estadístico
El proceso estadístico de los datos se efectuó mediante el software IBM SPSS Statistics (versión 21.0).
La variable población de nematodos fueron sometidas a una verificación preliminar de los supuestos de
normalidad y homogeneidad de varianzas, utilizando las pruebas de Kolmogorov–Smirnov y Levene,
respectivamente.
En los casos en que los datos cumplieron tales supuestos, se aplicó un análisis de varianza (ANOVA)
con el propósito de determinar la existencia de diferencias significativas entre los tratamientos.
Diseño experimental
El experimento se desarrolló bajo un diseño completamente al azar (DCA) para evaluar la eficiencia de
dos cepas de Trichoderma spp., como agente de control biológico frente a nematodos en plantas de
banano. Para esto se utilizaron 9 plantas de banano cada una de ellas colocadas en rizotrones el cual
consta de un vidrio transparente que nos permitirá ir observando el efecto de los respectivos tratamientos
(Vallejo et al., 2025).
Los tratamientos consistieron en la aplicación de la misma cantidad de hongo, mismas dosis de (5 x105)
ufc/ml a excepto del tratamiento T3 que corresponde a un testigo al cual no se le aplicó ningún producto
que actúe como controlador de la población de nematodos. Se hicieron 3 inoculaciones cada 30 días
donde para la verificación del estado de nematodos se tomaron raíces luego de cada aplicación.
Esta frecuencia permite un monitoreo efectivo de la evolución del control de nematodos y recuperación
de sistema radicular.
La variable evaluada fue: la población de nematodos con la identificación de sus géneros como
Radopholus spp. y Meloydogine. Para su extracción se usó el método de embudo de Baermann (Lopez-
Nicora et al., 2022).
Tabla 1. Tratamientos aplicados a las unidades experimentales.
Número Tratamiento Dosis
T1 Se aplicó Trichoderma asperellum. 40 ml de inóculo con (5 x105) ufc/ml.
T2 Se aplicó Trichoderma Pilulliferum 40 ml de inóculo con (5 x105) ufc/ml
T3 Tratamiento Control 40 ml de inóculo con (5 x105) ufc/ml
Análisis estadístico
El proceso estadístico de los datos se efectuó mediante el software IBM SPSS Statistics (versión 21.0).
La variable población de nematodos fueron sometidas a una verificación preliminar de los supuestos de
normalidad y homogeneidad de varianzas, utilizando las pruebas de Kolmogorov–Smirnov y Levene,
respectivamente.
En los casos en que los datos cumplieron tales supuestos, se aplicó un análisis de varianza (ANOVA)
con el propósito de determinar la existencia de diferencias significativas entre los tratamientos.
pág. 7626
Cuando se detectaron diferencias estadísticamente significativas, se procedió a realizar una prueba de
comparación múltiple de Tukey HSD para discriminar entre los tratamientos evaluados.
Cuando alguna variable no cumplió con los supuestos paramétricos, el análisis fue realizado mediante
la prueba no paramétrica de Kruskal–Wallis, seguida de comparaciones múltiples utilizando la prueba
de Dunn, según correspondió.
Todas las pruebas estadísticas fueron ejecutadas empleando un nivel de significancia de p ≤ 0.05.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Población inicial de nematodos
La población inicial de nematodos fitoparásitos (Radopholus y Meloidogyne) no presentó diferencias
estadísticas significativas entre tratamientos (p > 0.05), lo que confirma la homogeneidad de las
unidades experimentales al inicio del ensayo. Las densidades iniciales registradas se encuentran dentro
de los rangos comúnmente reportados para plantaciones de banano con síntomas de estrés radicular, lo
que valida la representatividad del material vegetal utilizado y permite atribuir los cambios posteriores
a la acción de los tratamientos aplicados(Ugalde et al., 2024)
Efecto de los tratamientos sobre Radopholus
A los 30 días después de la primera aplicación (PE), el análisis de varianza evidenció diferencias
estadísticas significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05). El tratamiento control presentó la mayor
población promedio de Radopholus, mientras que las plantas tratadas con Trichoderma asperellum y T.
piluliferum mostraron una reducción significativa de la población, sin diferencias estadísticas entre
ambas especies de Trichoderma (Figura 4A).
A los 60 días (SE), se mantuvo el mismo patrón de respuesta. El tratamiento con T. asperellum registró
la menor población promedio de Radopholus, seguido de T. piluliferum, mientras que el control
evidenció un incremento progresivo de la población del nematodo (Figura 4B). Estas diferencias fueron
estadísticamente significativas (p ≤ 0.05), lo que indica un efecto acumulativo de las aplicaciones
sucesivas del agente biológico.
A los 90 días (TE), el efecto nematicida fue más marcado. T. asperellum mostró la mayor capacidad de
supresión poblacional, seguido de T. piluliferum, mientras que el control presentó la población más alta
de Radopholus (Figura 4C).
Cuando se detectaron diferencias estadísticamente significativas, se procedió a realizar una prueba de
comparación múltiple de Tukey HSD para discriminar entre los tratamientos evaluados.
Cuando alguna variable no cumplió con los supuestos paramétricos, el análisis fue realizado mediante
la prueba no paramétrica de Kruskal–Wallis, seguida de comparaciones múltiples utilizando la prueba
de Dunn, según correspondió.
Todas las pruebas estadísticas fueron ejecutadas empleando un nivel de significancia de p ≤ 0.05.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Población inicial de nematodos
La población inicial de nematodos fitoparásitos (Radopholus y Meloidogyne) no presentó diferencias
estadísticas significativas entre tratamientos (p > 0.05), lo que confirma la homogeneidad de las
unidades experimentales al inicio del ensayo. Las densidades iniciales registradas se encuentran dentro
de los rangos comúnmente reportados para plantaciones de banano con síntomas de estrés radicular, lo
que valida la representatividad del material vegetal utilizado y permite atribuir los cambios posteriores
a la acción de los tratamientos aplicados(Ugalde et al., 2024)
Efecto de los tratamientos sobre Radopholus
A los 30 días después de la primera aplicación (PE), el análisis de varianza evidenció diferencias
estadísticas significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05). El tratamiento control presentó la mayor
población promedio de Radopholus, mientras que las plantas tratadas con Trichoderma asperellum y T.
piluliferum mostraron una reducción significativa de la población, sin diferencias estadísticas entre
ambas especies de Trichoderma (Figura 4A).
A los 60 días (SE), se mantuvo el mismo patrón de respuesta. El tratamiento con T. asperellum registró
la menor población promedio de Radopholus, seguido de T. piluliferum, mientras que el control
evidenció un incremento progresivo de la población del nematodo (Figura 4B). Estas diferencias fueron
estadísticamente significativas (p ≤ 0.05), lo que indica un efecto acumulativo de las aplicaciones
sucesivas del agente biológico.
A los 90 días (TE), el efecto nematicida fue más marcado. T. asperellum mostró la mayor capacidad de
supresión poblacional, seguido de T. piluliferum, mientras que el control presentó la población más alta
de Radopholus (Figura 4C).
pág. 7627
La prueba de comparación múltiple de Tukey agrupó al control en una categoría estadísticamente
diferente (letra A), mientras que ambos tratamientos con Trichoderma se ubicaron en el mismo grupo
estadístico (letra B), confirmando su eficacia como agentes de control biológico (Tuz et al., 2025).
Figura 4. Efecto de los tratamientos sobre Radopholus A) 30 dias, B) 60 días, C) 90 días.
Efecto de los tratamientos sobre Meloidogyne
En el caso de Meloidogyne, a los 30 días después de la aplicación, se observaron diferencias estadísticas
significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05). El tratamiento control presentó la mayor densidad
poblacional, mientras que T. asperellum y T. piluliferum redujeron significativamente la población del
nematodo (Figura 5A). En esta etapa inicial, T. piluliferum mostró una reducción ligeramente mayor,
aunque sin diferencias significativas respecto a T. asperellum.
A los 60 días, ambos tratamientos con Trichoderma mantuvieron poblaciones significativamente
menores que el control (p ≤ 0.05), evidenciando un efecto sostenido en el tiempo (Figura 5B).
A B
C
La prueba de comparación múltiple de Tukey agrupó al control en una categoría estadísticamente
diferente (letra A), mientras que ambos tratamientos con Trichoderma se ubicaron en el mismo grupo
estadístico (letra B), confirmando su eficacia como agentes de control biológico (Tuz et al., 2025).
Figura 4. Efecto de los tratamientos sobre Radopholus A) 30 dias, B) 60 días, C) 90 días.
Efecto de los tratamientos sobre Meloidogyne
En el caso de Meloidogyne, a los 30 días después de la aplicación, se observaron diferencias estadísticas
significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05). El tratamiento control presentó la mayor densidad
poblacional, mientras que T. asperellum y T. piluliferum redujeron significativamente la población del
nematodo (Figura 5A). En esta etapa inicial, T. piluliferum mostró una reducción ligeramente mayor,
aunque sin diferencias significativas respecto a T. asperellum.
A los 60 días, ambos tratamientos con Trichoderma mantuvieron poblaciones significativamente
menores que el control (p ≤ 0.05), evidenciando un efecto sostenido en el tiempo (Figura 5B).
A B
C
pág. 7628
Este comportamiento sugiere una adecuada colonización del hongo en la rizósfera y una interacción
continua con el nematodo.
A los 90 días, la población de Meloidogyne fue significativamente menor en las plantas tratadas con
Trichoderma spp., especialmente en el tratamiento con T. asperellum, mientras que el control presentó
un incremento progresivo (Figura 5C). La prueba de Tukey confirmó nuevamente la separación
estadística entre el control y los tratamientos biológicos.
Figura 5. Efecto de los tratamientos sobre Meloidogyne A) 30 dias, B) 60 días, C) 90 días.
Dinámica poblacional de nematodos en el tiempo
El análisis de la dinámica poblacional mostró que, en ausencia de tratamiento, las poblaciones de
Radopholus y Meloidogyne tendieron a incrementarse progresivamente desde la población inicial hasta
los 90 días. En contraste, los tratamientos con Trichoderma spp. mostraron una reducción sostenida de
ambas poblaciones a lo largo del tiempo (Figura 6).
A B
C
Este comportamiento sugiere una adecuada colonización del hongo en la rizósfera y una interacción
continua con el nematodo.
A los 90 días, la población de Meloidogyne fue significativamente menor en las plantas tratadas con
Trichoderma spp., especialmente en el tratamiento con T. asperellum, mientras que el control presentó
un incremento progresivo (Figura 5C). La prueba de Tukey confirmó nuevamente la separación
estadística entre el control y los tratamientos biológicos.
Figura 5. Efecto de los tratamientos sobre Meloidogyne A) 30 dias, B) 60 días, C) 90 días.
Dinámica poblacional de nematodos en el tiempo
El análisis de la dinámica poblacional mostró que, en ausencia de tratamiento, las poblaciones de
Radopholus y Meloidogyne tendieron a incrementarse progresivamente desde la población inicial hasta
los 90 días. En contraste, los tratamientos con Trichoderma spp. mostraron una reducción sostenida de
ambas poblaciones a lo largo del tiempo (Figura 6).
A B
C
pág. 7629
En Radopholus, T. asperellum presentó una mayor pendiente de disminución poblacional en
comparación con T. piluliferum, lo que sugiere una mayor actividad nematicida o una mejor adaptación
a la rizósfera del banano. En Meloidogyne, ambos tratamientos mostraron una reducción constante,
siendo más evidente a partir de los 60 días posteriores a la aplicación.
Estos resultados confirman que el efecto del control biológico no es inmediato, sino progresivo, y
depende de la colonización del sustrato y de la interacción del hongo con el patógeno a lo largo del
tiempo.
Figura 6. Dinámica poblacional de A) Radopholus y B) Meloidogyne desde la población inicial hasta
los 90 días.
DISCUSIÓN
La reducción significativa de las poblaciones de Radopholus y Meloidogyne observada en los
tratamientos con Trichoderma asperellum y T. piluliferum concuerda con lo reportado en la literatura
sobre el potencial nematicida de especies del género Trichoderma. Estos hongos ejercen su acción
mediante múltiples mecanismos, entre ellos la producción de metabolitos secundarios con efecto tóxico,
enzimas líticas, competencia por espacio y nutrientes, e inducción de resistencia en la planta hospedera.
El mayor efecto observado con T. asperellum, especialmente a los 90 días, podría estar asociado a una
mayor capacidad de colonización radicular y producción de compuestos bioactivos, lo que ha sido
descrito previamente en sistemas agrícolas tropicales. Por otro lado, T. piluliferum mostró una eficacia
consistente, aunque ligeramente inferior, lo que lo posiciona también como una alternativa viable dentro
de programas de manejo integrado(Lara Posadas et al., 2016)
A B
En Radopholus, T. asperellum presentó una mayor pendiente de disminución poblacional en
comparación con T. piluliferum, lo que sugiere una mayor actividad nematicida o una mejor adaptación
a la rizósfera del banano. En Meloidogyne, ambos tratamientos mostraron una reducción constante,
siendo más evidente a partir de los 60 días posteriores a la aplicación.
Estos resultados confirman que el efecto del control biológico no es inmediato, sino progresivo, y
depende de la colonización del sustrato y de la interacción del hongo con el patógeno a lo largo del
tiempo.
Figura 6. Dinámica poblacional de A) Radopholus y B) Meloidogyne desde la población inicial hasta
los 90 días.
DISCUSIÓN
La reducción significativa de las poblaciones de Radopholus y Meloidogyne observada en los
tratamientos con Trichoderma asperellum y T. piluliferum concuerda con lo reportado en la literatura
sobre el potencial nematicida de especies del género Trichoderma. Estos hongos ejercen su acción
mediante múltiples mecanismos, entre ellos la producción de metabolitos secundarios con efecto tóxico,
enzimas líticas, competencia por espacio y nutrientes, e inducción de resistencia en la planta hospedera.
El mayor efecto observado con T. asperellum, especialmente a los 90 días, podría estar asociado a una
mayor capacidad de colonización radicular y producción de compuestos bioactivos, lo que ha sido
descrito previamente en sistemas agrícolas tropicales. Por otro lado, T. piluliferum mostró una eficacia
consistente, aunque ligeramente inferior, lo que lo posiciona también como una alternativa viable dentro
de programas de manejo integrado(Lara Posadas et al., 2016)
A B
pág. 7630
El incremento poblacional observado en el tratamiento control confirma la capacidad de estos
nematodos para multiplicarse rápidamente en ausencia de medidas de manejo, resaltando la importancia
de implementar estrategias de control biológico que reduzcan la dependencia de nematicidas químicos
y contribuyan a una producción de banano más sostenible.
CONCLUSIÓN
Los resultados obtenidos en el presente estudio demuestran que la aplicación de Trichoderma
asperellum y T. piluliferum ejerce un efecto nematicida significativo sobre las poblaciones de
Radopholus y Meloidogyne en el cultivo de banano. Ambos tratamientos lograron reducir de manera
progresiva la densidad poblacional de los nematodos fitoparásitos en comparación con el control,
evidenciando un efecto sostenido a lo largo del tiempo. En particular, T. asperellum mostró una mayor
eficiencia en la supresión poblacional, especialmente a los 90 días, lo que sugiere una mejor adaptación
a la rizósfera y una mayor actividad biológica frente a los patógenos evaluados. Estos hallazgos
confirman el potencial de las cepas de Trichoderma spp. como herramientas efectivas dentro de
programas de manejo integrado de nematodos, contribuyendo a la reducción del uso de productos
químicos y promoviendo sistemas de producción de banano más sostenibles y ambientalmente
responsable.
REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS
Araya, M. (2002). Metodología utilizada en el Laboratorio de Nematología de CORBANA S.A. para la
extracción de nematodos de las raíces de banano (Musa AAA) y plátano (Musa AAB).
CORBANA.
https://www.researchgate.net/publication/288946065_Metodologia_utilizada_en_el_Laboratorio
_de_Nematologia_de_CORBANA_SA_para_la_extraccion_de_nematodos_de_las_raices_de_b
anano_Musa_AAA_y_platano_Musa_AAB
Contreras-Soto, M. B., Tovar-Pedraza, J. M., Solano-Báez, A. R., Bayardo-Rosales, H., & Márquez-
Licona, G. (2025). Biocontrol Strategies Against Plant-Parasitic Nematodes Using Trichoderma
spp.: Mechanisms, Applications, and Management Perspectives. Journal of Fungi, 11(7).
https://doi.org/10.3390/JOF11070517
El incremento poblacional observado en el tratamiento control confirma la capacidad de estos
nematodos para multiplicarse rápidamente en ausencia de medidas de manejo, resaltando la importancia
de implementar estrategias de control biológico que reduzcan la dependencia de nematicidas químicos
y contribuyan a una producción de banano más sostenible.
CONCLUSIÓN
Los resultados obtenidos en el presente estudio demuestran que la aplicación de Trichoderma
asperellum y T. piluliferum ejerce un efecto nematicida significativo sobre las poblaciones de
Radopholus y Meloidogyne en el cultivo de banano. Ambos tratamientos lograron reducir de manera
progresiva la densidad poblacional de los nematodos fitoparásitos en comparación con el control,
evidenciando un efecto sostenido a lo largo del tiempo. En particular, T. asperellum mostró una mayor
eficiencia en la supresión poblacional, especialmente a los 90 días, lo que sugiere una mejor adaptación
a la rizósfera y una mayor actividad biológica frente a los patógenos evaluados. Estos hallazgos
confirman el potencial de las cepas de Trichoderma spp. como herramientas efectivas dentro de
programas de manejo integrado de nematodos, contribuyendo a la reducción del uso de productos
químicos y promoviendo sistemas de producción de banano más sostenibles y ambientalmente
responsable.
REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS
Araya, M. (2002). Metodología utilizada en el Laboratorio de Nematología de CORBANA S.A. para la
extracción de nematodos de las raíces de banano (Musa AAA) y plátano (Musa AAB).
CORBANA.
https://www.researchgate.net/publication/288946065_Metodologia_utilizada_en_el_Laboratorio
_de_Nematologia_de_CORBANA_SA_para_la_extraccion_de_nematodos_de_las_raices_de_b
anano_Musa_AAA_y_platano_Musa_AAB
Contreras-Soto, M. B., Tovar-Pedraza, J. M., Solano-Báez, A. R., Bayardo-Rosales, H., & Márquez-
Licona, G. (2025). Biocontrol Strategies Against Plant-Parasitic Nematodes Using Trichoderma
spp.: Mechanisms, Applications, and Management Perspectives. Journal of Fungi, 11(7).
https://doi.org/10.3390/JOF11070517
pág. 7631
Coyne, D., Nicol, J., & Claudius-Cole, B. (2007). Practical plant nematology: A field and laboratory
guide. Internacional Institute of Tropical Agriculture (IITA).
Guevara, F., Miranda, I., Ceiro, W., Hidalgo, L., & Arévalo, J. (2024, diciembre 4). Géneros de
nematodos parásitos de raíces de banano (Musa paradisiaca L.) en la provincia Los Ríos, Ecuador.
Revista de Protección Vegetal.
https://censa.edicionescervantes.com/index.php/RPV/article/view/1359
González, G. H., González-Pedraza, A. F., Pineda-Zambrano, M., Casanova-Yepez, M., Rodríguez-
Yzquierdo, G., & Soto-Bracho, A. (2021). Populations of phytonematodes associated to the vigor
of plantain plants. Agronomia Mesoamericana, 32(1), 163–177.
https://doi.org/10.15517/am.v32i1.39697
Lara Posadas, S. V., Núñez Sánchez, Á. E., López-Lima, D., Carrión, G., Lara Posadas, S. V., Núñez
Sánchez, Á. E., López-Lima, D., & Carrión, G. (2016). Plant parasitic nematodes associated to
banana roots ( Musa acuminata AA) in central Veracruz, México. Revista mexicana de
fitopatología, 34(1), 116-130. https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.1507-7
Lopez-Nicora, H., Soilán Duarte, L. C., Caballero Mairesse, G. G., Grabowski Ocampos, C. J., &
Enciso Maldonado, G. A. (2022). Manual de nematología agrícola, bases y procedimientos.
Manual de nematología agrícola, bases y procedimientos. https://doi.org/10.53997/DFXA5914
Mata Anchundia, D., Suatunce Cunuhay, P., & Poveda Morán, R. (2021). Economic analysis of organic
and conventional banana production in Los Ríos province, Ecuador. Avances: Cuba, ISSN-e 1562-
3297, Vol. 23, No. 4, 2021, págs. 419-430, 23(4), 419-430.
https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=8938888&info=resumen&idioma=SPA
Saharan, R., Patil, J. A., Yadav, S., Kumar, A., & Goyal, V. (2023). The nematicidal potential of novel
fungus, Trichoderma asperellum FbMi6 against Meloidogyne incognita. Scientific Reports |, 13,
6603. https://doi.org/10.1038/s41598-023-33669-z
Tintori, S. C., Sloat, S. A., & Rockman, M. V. (2022). Rapid Isolation of Wild Nematodes by Baermann
Funnel. Journal of visualized experiments : JoVE, 2022(179), 10.3791/63287.
https://doi.org/10.3791/63287
Coyne, D., Nicol, J., & Claudius-Cole, B. (2007). Practical plant nematology: A field and laboratory
guide. Internacional Institute of Tropical Agriculture (IITA).
Guevara, F., Miranda, I., Ceiro, W., Hidalgo, L., & Arévalo, J. (2024, diciembre 4). Géneros de
nematodos parásitos de raíces de banano (Musa paradisiaca L.) en la provincia Los Ríos, Ecuador.
Revista de Protección Vegetal.
https://censa.edicionescervantes.com/index.php/RPV/article/view/1359
González, G. H., González-Pedraza, A. F., Pineda-Zambrano, M., Casanova-Yepez, M., Rodríguez-
Yzquierdo, G., & Soto-Bracho, A. (2021). Populations of phytonematodes associated to the vigor
of plantain plants. Agronomia Mesoamericana, 32(1), 163–177.
https://doi.org/10.15517/am.v32i1.39697
Lara Posadas, S. V., Núñez Sánchez, Á. E., López-Lima, D., Carrión, G., Lara Posadas, S. V., Núñez
Sánchez, Á. E., López-Lima, D., & Carrión, G. (2016). Plant parasitic nematodes associated to
banana roots ( Musa acuminata AA) in central Veracruz, México. Revista mexicana de
fitopatología, 34(1), 116-130. https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.1507-7
Lopez-Nicora, H., Soilán Duarte, L. C., Caballero Mairesse, G. G., Grabowski Ocampos, C. J., &
Enciso Maldonado, G. A. (2022). Manual de nematología agrícola, bases y procedimientos.
Manual de nematología agrícola, bases y procedimientos. https://doi.org/10.53997/DFXA5914
Mata Anchundia, D., Suatunce Cunuhay, P., & Poveda Morán, R. (2021). Economic analysis of organic
and conventional banana production in Los Ríos province, Ecuador. Avances: Cuba, ISSN-e 1562-
3297, Vol. 23, No. 4, 2021, págs. 419-430, 23(4), 419-430.
https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=8938888&info=resumen&idioma=SPA
Saharan, R., Patil, J. A., Yadav, S., Kumar, A., & Goyal, V. (2023). The nematicidal potential of novel
fungus, Trichoderma asperellum FbMi6 against Meloidogyne incognita. Scientific Reports |, 13,
6603. https://doi.org/10.1038/s41598-023-33669-z
Tintori, S. C., Sloat, S. A., & Rockman, M. V. (2022). Rapid Isolation of Wild Nematodes by Baermann
Funnel. Journal of visualized experiments : JoVE, 2022(179), 10.3791/63287.
https://doi.org/10.3791/63287
pág. 7632
Troya, C., & Vaca, leonardo. (2014). Proyecto De Innovación Tecnológica Participativa Y
Productividad Agrícola PITPPA Elaboración: Componente 1 PITPPA.
https://www.agricultura.gob.ec/wp-content/uploads/2016/01/MANUAL-labos-para-web.pdf
Tuz-Guncay, I. G., Simbaña-Villarreal, A., Quevedo-Guerrero, J. N., & Vera-Cruz, E. F. (2025).
Trichoderma asperellum: persistencia en el suelo bajo distintos métodos de aplicación en cultivo
de banano. Revista Metropolitana de Ciencias Aplicadas, 8(4), 77-86.
https://doi.org/10.62452/BJ7Q9284
Ugalde, M. B., Artavia-Carmona, R., Hilje-Rodríguez, I., Peraza-Padilla, W., Ugalde-Monge, B.,
Artavia-Carmona, R., Hilje-Rodríguez, I., & Peraza-Padilla, W. (2024). Isolation and
identification of potential nematophagous fungi in banana farms from the Huetar Atlantic Region
of Costa Rica. Agronomía Costarricense, 48(2), 111-131.
https://doi.org/10.15517/RAC.V48I2.62489
Vallejo, L. ;, Adrian Marcelo, Sayda, ;, Reyes, H., Jaramillo Aguilar, ; Edison, Ricardo, D., & Ortiz, V.
(2025). Antagonistic activity of bioactive substances for the control of phytoparasitic nematodes
in banana crops (Musa AAB). Manglar, 22(1), 15-23. https://doi.org/10.57188/manglar.2025.002
Vargas, M. A., Elizondo, E. S., & Calvo, A. V. (2011). Relación entre el contenido de nutrientes en suelo
y raíces de banano (musa AAA) con el peso de raíce y número de nematodos. fitosanidad, 15(3),
163–177.
Troya, C., & Vaca, leonardo. (2014). Proyecto De Innovación Tecnológica Participativa Y
Productividad Agrícola PITPPA Elaboración: Componente 1 PITPPA.
https://www.agricultura.gob.ec/wp-content/uploads/2016/01/MANUAL-labos-para-web.pdf
Tuz-Guncay, I. G., Simbaña-Villarreal, A., Quevedo-Guerrero, J. N., & Vera-Cruz, E. F. (2025).
Trichoderma asperellum: persistencia en el suelo bajo distintos métodos de aplicación en cultivo
de banano. Revista Metropolitana de Ciencias Aplicadas, 8(4), 77-86.
https://doi.org/10.62452/BJ7Q9284
Ugalde, M. B., Artavia-Carmona, R., Hilje-Rodríguez, I., Peraza-Padilla, W., Ugalde-Monge, B.,
Artavia-Carmona, R., Hilje-Rodríguez, I., & Peraza-Padilla, W. (2024). Isolation and
identification of potential nematophagous fungi in banana farms from the Huetar Atlantic Region
of Costa Rica. Agronomía Costarricense, 48(2), 111-131.
https://doi.org/10.15517/RAC.V48I2.62489
Vallejo, L. ;, Adrian Marcelo, Sayda, ;, Reyes, H., Jaramillo Aguilar, ; Edison, Ricardo, D., & Ortiz, V.
(2025). Antagonistic activity of bioactive substances for the control of phytoparasitic nematodes
in banana crops (Musa AAB). Manglar, 22(1), 15-23. https://doi.org/10.57188/manglar.2025.002
Vargas, M. A., Elizondo, E. S., & Calvo, A. V. (2011). Relación entre el contenido de nutrientes en suelo
y raíces de banano (musa AAA) con el peso de raíce y número de nematodos. fitosanidad, 15(3),
163–177.