Programación nutricional en el pejelagarto (Atractosteus tropicus): efecto del almidón de maíz sobre la bioquímica sanguínea

  • Rocío Guerrero Zárate Laboratorio de Acuicultura Tropical, División Académica de Ciencias Biológicas, Universidad Juárez Autónoma de Tabasco (UJAT), Carretera Villahermosa-Cárdenas s/n, Km 0, C.P. 86039 Villahermosa, Tabasco, México
  • Ronald Jesús Contreras Laboratorio de Acuicultura Tropical, División Académica de Ciencias Biológicas, Universidad Juárez Autónoma de Tabasco (UJAT), Carretera Villahermosa-Cárdenas s/n, Km 0, C.P. 86039 Villahermosa, Tabasco, México
  • Carlos Alfonso Álvarez González Laboratorio de Acuicultura Tropical, División Académica de Ciencias Biológicas, Universidad Juárez Autónoma de Tabasco (UJAT), Carretera Villahermosa-Cárdenas s/n, Km 0, C.P. 86039 Villahermosa, Tabasco, México.

Resumen

El pejelagarto es una especie carnívora, en la que se ha demostrado una mejora en el crecimiento durante el larvicultivo al incluir almidón de maíz en su dieta, así como una eficiencia en la ruta de la gluconeogénesis al utilizar hasta 23% de carbohidratos en sus dietas. El objetivo de esta investigación fue determinar si el uso de almidón de maíz en el larvicultivo puede producir un afecto de programación metabólica, determinado mediante la bioquímica sanguínea durante la etapa juvenil. Los peces fueron divididos en 3 grupos, los cuales se alimentaron durante 73 días con las dietas experimentales, que tenían diferente porcentaje de inclusión de almidón de maíz (13.8, 22.5 y 28.9 % de carbohidratos). Posteriormente, los peces de los 3 grupos fueron sometidos a una prueba de tolerancia a la glucosa y se midió la concentración de glucosa, triglicéridos y colesterol a las 0, 1.5, 3 y 5 h después de aplicar una descarga de dextrosa intraperitonealmente. Los resultados demuestran que la concentración de carbohidratos y lípidos suministrada mediante la dieta durante la etapa temprana de crianza puede modificar de forma permanente las concentraciones de glucosa y triglicéridos en plasma de los pejelagartos juveniles.

Palabras clave: pejelagarto, glucosa, almidón maíz, programación metabólica, gluconeogénesis

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Citas

Enes, P., Panserat, S., Kaushik, S., & Oliva-Teles, A. (2006). Effect of normal and waxy maize starch on growth, food utilization and hepatic glucose metabolism in European sea bass (Dicentrarchus labrax) juveniles. Comparative Biochemistry and Physiology - A Molecular and Integrative Physiology, 143(1), 89–96. https://doi.org/10.1016/j.cbpa.2005.10.027

Enes, P., Panserat, S., Kaushik, S., & Oliva-Teles, A. (2008). Growth performance and metabolic utilization of diets with native and waxy maize starch by gilthead sea bream (Sparus aurata) juveniles. Aquaculture, 274(1), 101–108. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2007.11.009

Fang, L., Liang, X. F., Zhou, Y., Guo, X. Z., He, Y., Yi, T. L., Liu, L.W., Yuan, X.C. & Tao, Y. X. (2014). Programming effects of high-carbohydrate feeding of larvae on adult glucose metabolism in zebrafish, Danio rerio. British Journal of Nutrition, 111(5), 808–818. https://doi.org/10.1017/S0007114513003243

Folch, J., Lees, M., & Sloan Stanley, G. (1957). A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. The Journal of Biological Chemistry, 226, 497–509. https://doi.org/10.1016/j.ultrasmedbio.2011.03.005

Frías-Quintana, C., Álvarez-González, C., & Márquez-Couturier, G. (2010). Diseño de microdietas para el cultivo de pejelagarto Atractosteus tropicus, Gill 1863. Universidad y Ciencia, 26(2), 265–282.

Frías-Quintana, C., Domínguez-Lorenzo, J., Álvarez-González, C., Tovar-Ramírez, D., & Martínez-García, R. (2016). Using cornstarch in microparticulate diets for larvicultured tropical gar (Atractosteus tropicus). Fish Physiology and Biochemistry, 42(2), 517–528. https://doi.org/10.1007/s10695-015-0156-4

Gong, G., Xue, M., Wang, J., Wu, X. F., Zheng, Y. H., Han, F., Liang, X. F & Su, X. O. (2015). The regulation of gluconeogenesis in the Siberian sturgeon (Acipenser baerii) affected later in life by a short-term high-glucose programming during early life. Aquaculture, 436, 127–136. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2014.10.044

Guerrero-Zárate, R., Álvarez-González, C., Jesus-Contreras, R., Peña-Marín, E., Martínez-García, R., Galaviz, M., López L.M. & Llera-Herrera, R. (2019). Evaluation of carbohydrate / lipid ratios on growth and metabolic response in tropical gar ( Atractosteus tropicus ) juvenile. Aquaculture Research, 50, 1812–1823. https://doi.org/10.1111/are.14060

Guerrero-Zárate, R., Alvarez-González, C., Olvera-Novoa, M., Perales-García, N., Frías-Quintana, C., Martínez-García, R., & Contreras-Sánchez, W. (2014). Partial characterization of digestive proteases in tropical gar Atractosteus tropicus juveniles. Fish Physiology and Biochemistry, 40(4), 1021–1029. https://doi.org/10.1007/s10695-013-9902-7

Hemre, G.-I., Mommsen, T. P., & Krogodahl, A. (2002). Carbohydrates in fish nutrition: effects on growth, glucose metabolism and hepatic enzymes. Aquaculture Nutrition, 8(3), 175–194. https://doi.org/10.1046/j.1365-2095.2002.00200.x

Hou, Z., & Fuiman, L. A. (2019). Nutritional programming in fishes : insights from mammalian studies. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 30(5), 67-92. https://doi.org/10.1007/s11160-019-09590-y

Kamalam, B., Medale, F., & Panserat, S. (2017). Utilisation of dietary carbohydrates in farmed fishes: New insights on influencing factors, biological limitations and future strategies. Aquaculture, 467, 3–27. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2016.02.007

Kamalam, B., & Panserat, S. (2016). Carbohydrates in fish nutrition. International AquaFeed, April, 20-23. https://doi.org/10.13140/RG.2.1.4570.6645

Liang, X., Wang, J., Gong, G., Xue, M., Dong, Y., Wu, X., Wang, X., Chen, C. Liang, X. & Qin, Y. (2017). Gluconeogenesis during starvation and refeeding phase is affected by previous dietary carbohydrates levels and a glucose stimuli during early life in Siberian sturgeon (Acipenser baerii). Animal Nutrition, 3(3), 284–294. https://doi.org/10.1016/j.aninu.2017.06.001

Márquez-Couturier, G., Vázquez-Navarrete, C., Contreras-Sánchez, W., & Alvarez-González, C. (2015). Acuicultura tropical sustentable: Una estrategia para la producción y conservación del pejelagarto (Atractosteus tropicus) en Tabasco, México (2a). Villahermosa, Tabasco: Universidad Juárez Autónoma de Tabasco. http://publicaciones.ujat.mx/cientificas/Documentos/Biología/36/Acuicultura tropical sustentable 11.pdf

Panserat, S., Marandel, L., & Seiliez, I. (2019). New insights on intermediary metabolism for a better understanding of nutrition in teleosts. Annual Review of Animal Bioscience, 7, 195-220. https://doi.org/10.1146/annurev-animal-020518-115250

Panserat, S., Médale, F., Blin, C., Brèque, J., Vachot, C., Plagnes-Juan, E., Gomes, E., Krishnamoorthy, R. & Kaushik, S. (2000). Hepatic glucokinase is induced by dietary carbohydrates in rainbow trout, gilthead seabream, and common carp. American Journal of Physiology- Regulatory, Integrative and Comparative Physiology, 278, 1164–1170.

Panserat, S., Médale, F., Brèque, J., Plagnes-Juan, E., & Kaushik, S. (2000). Lack of significant long-term effect of dietary carbohydrates on hepatic glucose-6-phosphatase expression in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). The Journal of Nutritional Biochemistry, 11(1), 22–29. https://doi.org/10.1016/S0955-2863(99)00067-4

Polakof, S., Mommsen, T. P., & Soengas, J. L. (2011). Glucosensing and glucose homeostasis: From fish to mammals. Comparative Biochemistry and Physiology - B Biochemistry and Molecular Biology, 160(4), 123–149. https://doi.org/10.1016/j.cbpb.2011.07.006

Polakof, S., Panserat, S., Soengas, J. L., & Moon, T. W. (2012). Glucose metabolism in fish: A review. Journal of Comparative Physiology B: Biochemical, Systemic, and Environmental Physiology, 182(8), 1015–1045. https://doi.org/10.1007/s00360-012-0658-7

Polakof, S., Skiba-Cassy, S., & Panserat, S. (2009). Glucose homeostasis is impaired by a paradoxical interaction between metformin and insulin in carnivorous rainbow trout. American Journal of Physiology - Regulatory Integrative & Comparative Physiology, 297, R1769–R1776. https://doi.org/10.1152/ajpregu.00369.2009.

Thivend, P., Mercier, C., & Guilbot, A. (1972). Determination of starch with glucoamylase. In R. Whistler & J. Bemiller (Eds.), General Carbohydrate Method (pp. 100–105). New York, USA: Academic Press. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-746206-6.50021-7

William Horwitz. (2000). Official methods of analysis of AOAC International. Association of Official Analytical Chemists (17th ed.). Gaithersburg, MD, USA.

Wilson, R. P. (1994). Utilization of dietary carbohydrate by fish. Aquaculture, 124(1–4), 67–80. https://doi.org/10.1016/0044-8486(94)90363-8

Publicado
2021-12-02
Cómo citar
Guerrero Zárate, R., Contreras, R. J., & Álvarez González, C. A. (2021). Programación nutricional en el pejelagarto (Atractosteus tropicus): efecto del almidón de maíz sobre la bioquímica sanguínea. Ciencia Latina Revista Científica Multidisciplinar, 5(6), 11853-11867. https://doi.org/10.37811/cl_rcm.v5i6.1203
Sección
Artículos