Efecto de la Infusión Intraperitoneal de Lidocaína sobre la Recuperación Anestésica en Ratas Albinas (Rattus norvegicus)

Palabras clave: Infusión intraperitoneal, Lidocaína, Anestesia, Recuperación anestésica, Rattus norvegicus

Resumen

Objetivo: La finalidad de este estudio es evaluar el efecto de la lidocaína por vía intraperitoneal sobre la recuperación anestésica en ratas albinas previamente anestesiadas con ketamina + xilacina, medida a través del tiempo de recuperación y parámetros fisiológicos. Métodos: Se ejecutó un estudio experimental con cuatro grupos, nueve ratas cada grupo. Grupo A, grupo control el cual no recibió lidocaína; grupo B que recibió 8 mg/kg de peso de lidocaína; grupo C que recibió 12 mg/kg de peso de lidocaína; grupo D que recibió 16 mg/kg de peso de lidocaína. Luego de estar bajo anestesia general (ketamina + xilacina), la lidocaína fue aplicada por vía intraperitoneal. El tiempo fue medido desde la aplicación de la anestesia general hasta la recuperación del individuo. El análisis de datos se realizó con un modelo lineal generalizado con distribución de poisson, utilizando el peso como co-variable. Resultados: El tiempo de recuperación sí se ve afectado por la aplicación de lidocaína por vía intraperitoneal y esto puede deberse a varios factores.  Conclusión: La lidocaína sí prolonga el tiempo de duración y recuperación de anestesia, según el tiempo en el que este sea aplicado. Las dosis evaluadas son seguras para el uso del médico veterinario en la clínica.

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Abu-Zaid, A., Baradwan, S., Himayda, S., Badghish, E., Saeed, M., Talat, N., Almatrafi, R., Bahathiq, F., Alomar, O., Abdulrahman, I., & Salem, H. (2021). Intraperitoneal lidocaine instillation during abdominal hysterectomy: A systematic review and meta-analysis of randomized placebo-controlled trials. Journal of Gynecology Obstetrics and Human Reproduction, 50(10), 102-226. https://doi:10.1016/j.jogoh.2021.102226

Alegría Bernal, C. M. (2024). La Norma Iso 21001 Y Su Aplicación En El Ámbito De La Educación Superior. Estudios Y Perspectivas Revista Científica Y Académica , 4(2), 374–389.

https://doi.org/10.61384/r.c.a.v4i2.228

Barros, C., Machado, A., Kimiko, R. (2012). Intraoperative Intravenous Lidocaine. Revista Brasileira de Anestesiología, 60(3), 325-333. https://doi:10.1016/S0034-7094(10)70041-6

Bigelow, L. J., Pope, E. K., MacDonald, D. S., Rock, J. E., & Bernard, P. B. (2023). Getting a handle on rat familiarization: The impact of handling protocols on classic tests of stress in Rattus norvegicus. Laboratory Animals, 57(3). https://doi.org/10.1177/00236772221142687

Buitrago, S., Martin, T. E., Tetens-Woodring, J., Belicha-Villanueva, A., & Wilding, G. E. (2008). Safety and efficacy of various combinations of injectable anesthetics in BALB/c mice. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science, 47(1), 11-17. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18210992/

Carpenter, J., & Marion, C. (2018). Exotic Animal Formulary. St. Louis: ELSEVIER.

Da Silva Santos , F., & López Vargas , R. (2020). Efecto del Estrés en la Función Inmune en Pacientes con Enfermedades Autoinmunes: una Revisión de Estudios Latinoamericanos. Revista Científica De Salud Y Desarrollo Humano, 1(1), 46–59. https://doi.org/10.61368/r.s.d.h.v1i1.9

EMEA (1999). Committee for Veterinary Medicinal Products: Lidocaine. European Medicine Agency. https://www.ema.europa.eu/en/documents/mrl-report/lidocaine-summary-report-committee-veterinary-medicinal-products_en.pdf

Firmawati, A. (2018). Innovation In Breeding, Production, And Marketing Rattus Norvegicus As The Experimental Animal Laboratory. Journal of Innovation and Applied Technology, 4(2), 723-726. http://dx.doi.org/10.21776/ub.jiat.2018.004.02.1

Fernández C., F. (2024). Determinación De Erodabilidad En Áreas De Influencia Cuenca Poopo Región Andina De Bolivia. Horizonte Académico, 4(4), 63–78. Recuperado a partir de

https://horizonteacademico.org/index.php/horizonte/article/view/19

Gargiulo, S., Greco, A., Gramanzini, M., Esposito, S., Affuso, A., Brunetti, A., & Vesce, G. (2012). Mice anesthesia, analgesia, and care, Part I: anesthetic considerations in preclinical research. ILAR journal, 53(1), 55-69. https://doi.org/10.1093/ilar.53.1.55

Gallegos Medina, S. L. (2024). Desarrollo Sociocultural durante la Primera Infancia desde una Perspectiva Psicológica. Emergentes - Revista Científica, 4(1), 12–21.

https://doi.org/10.60112/erc.v4i1.86

Handayani, E. S., Nugraha, Z. S., & Kuswati, K. (2020). P53 expression in ischemic rat models after the administration of ketamine and ketamine-xylazine. Pharmaciana, 10(1), 89.

http://dx.doi.org/10.12928/pharmaciana.v10i1.13451

Hou, C. Y., & Protopopova, A. (2022). Rats as pets: Predictors of adoption and surrender of pet rats (Rattus norvegicus domestica) in British Columbia, Canada. Plos one, 17(2).

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0264262

Hulme-Beaman, A., Orton, D., & Cucchi, T. (2021). The origins of the domesticated brown rat (Rattus norvegicus) and its pathways to domestication. Animal Frontiers, 11(3), 78-86. https://doi.org/10.1093/af/vfab020

Imani, A., Rajani, S. F., Rakhshan, K., Faghihi, M., Nemati, M., & Parsazadegan, T. (2022). The role of nitric oxide on the antiarrhythmic effects of ketamine/xylazine in a rat model of acute cardiac ischemia-reperfusion. Current Research in Physiology, 5, 302-311. https://doi.org/10.1016/j.crphys.2022.06.008

Kindler y Yost. (2005). Two-Pore Domain Potassium Channels: New Sites of Local Anesthetic Action and Toxicity. Regional Anesthesia and Pain Medicine, 30(3), 260–274.

https://doi:10.1016/j.rapm.2004.12.001

Miller, E., & Fowler, M. (2015). Fowler's Zoo and Wild Animal Medicine. Missouri: ELSEVIER.

Miyoshi, H., Kato, T., Nakamura, R., Saeki, N., Noda, Y., Kamiya, S., Morio, A & Tsutsumi, Y. (2020) Pharmacokinetics of intraperitoneal and subcutaneous levobupivacaine in anesthetized rats. Japanese Society of Anesthesiologists, 35, 168-174. https://doi.org/10.1007/s00540-020-02883-8

Modlinska, K., & Pisula, W. (2020). The Norway rat, from an obnoxious pest to a laboratory pet. Elife, 9. https://doi.org/10.7554/eLife.50651

Moreno, C., & Prada, D. M. (2004). Fisiopatología del dolor clínico. Asociación Colombiana de Neurología. http://www.acnweb.org/guia/g3cap2.pdf

Montes López, V. (2023). Socioeconomic Inequalities in Health: A Challenge for Equity. Revista Veritas De Difusão Científica, 4(1), 18–29. https://doi.org/10.61616/rvdc.v4i1.35

Medina Nolasco, E. K., Mendoza Buleje, E. R., Vilca Apaza, G. R., Mamani Fernández, N. N., & Alfaro Campos, K. (2024). Tamizaje de cáncer de cuello uterino en mujeres de una región Andina del Perú. Arandu UTIC, 11(1), 50–63. https://doi.org/10.69639/arandu.v11i1.177

Ploss, A., & Kapoor, A. (2020). Animal models of hepatitis C virus infection. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine, 10(5). https://doi.org/10.1101/cshperspect.a036970

Plumb, D. (2011). Veterinary Drug Handbook. Minnesota: Peregrine Graphics Services St. Paul

Prando, S., Carneiro, C. D. G., Otsuki, D. A., & Sapienza, M. T. (2019). Effects of ketamine/xylazine and isoflurane on rat brain glucose metabolism measured by 18F‐fluorodeoxyglucose‐positron emission tomography. European Journal of Neuroscience, 49(1), 51-61.

https://doi.org/10.1111/ejn.14252

Ramirez-Paesano CR, Juanola, A., Gilete, V., Oliver, B., Rodiera, C., Rodiera, J., Santaliestra, J. & Mora, F. (2020). Opioid-Free Anesthesia Plus Postoperative Management Focused on Anti-Hyperalgesia Approach in Patients with Joint Hypermobility Syndrome Undergoing Occipital-Cervical Fixation: A Narrative Review and Authors' Perspective. Neurology Research & Surgery, 3(1), 1-11. https://doi:10.33425/2641-4333.1030

Smith, J. R., Bolton, E. R., & Dwinell, M. R. (2019). The rat: a model used in biomedical research. Rat Genomics, 1-41. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-9581-3_1

Shoyaib, A., Archie, S. & Karamyan, V. (2020) Intraperitoneal Route of Drug Administration: Should it Be Used in Experimental Animal Studies?. Pharm Res 37(12).

https://doi.org/10.1007/s11095-019-2745-x

Średniawa, W., Wróbel, J., Kublik, E., Wójcik, D. K., Whittington, M. A., & Hunt, M. J. (2021). Network and synaptic mechanisms underlying high frequency oscillations in the rat and cat olfactory bulb under ketamine-xylazine anesthesia. Scientific Reports, 11(1), 6390. https://doi.org/10.1038/s41598-021-85705-5

Tsukamoto, A., Serizawa, K., Sato, R., Yamazaki, J., & Inomata, T. (2015). Vital signs monitoring during injectable and inhalant anesthesia in mice. Experimental animals, 64(1), 57-64. https://doi.org/10.1538/expanim.14-0050

Vargas, J. J. (2020). Parámetros fisiológicos y metabólicos de la rata de laboratorio (Rattus norvegicus). Revista Médica Basadrina, 14(2), 64-68.

https://doi.org/10.33326/26176068.2020.2.1016

Welsh, L. (2009). Anasthesia for Veterinary Nurses. United Kingdom: John Wiley & Sons, Ltd.

Wenger, S. (2012). Anesthesia and analgesia in rabbits and rodents. Journal of exotic pet medicine, 21(1), 7-16. https://doi.org/10.1053/j.jepm.2011.11.010

West, G., Heard, D., & Caulkett, N. (2014). Zoo Animal and Wildlife Inmobilization and Anesthesia. Iowa: Wiley Blackwell.

Żakowski, W. (2020). Animal use in neurobiological research. Neuroscience, 433, 1-10. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2020.02.049

Zeballos , F. (2024). Shock Séptico en Terapia Intensiva Adulto del Hospital San Juan de Dios de la Ciudad de Tarija: Revista Científica de Salud y Desarrollo Humano. Revista Científica De Salud Y Desarrollo Humano, 5(2), 179–191. https://doi.org/10.61368/r.s.d.h.v5i2.128

Publicado
2024-08-06
Cómo citar
Cabrera Pocasangre , L. M., Recinos Donis, R. J., & Meoño Sánchez, E. R. (2024). Efecto de la Infusión Intraperitoneal de Lidocaína sobre la Recuperación Anestésica en Ratas Albinas (Rattus norvegicus). Ciencia Latina Revista Científica Multidisciplinar, 8(4), 942-955. https://doi.org/10.37811/cl_rcm.v8i4.12337
Sección
Ciencias de la Salud